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Amandes, pistaches et noix modèles de maladies
Anthracnose du noyer
La maladie de l'anthracnose du noyer est causée par le champignon pathogène Gnomonia leptostyla (stade imparfait : Marssonina juglandis), qui infecte principalement les noyers noirs de l'Est (Juglans nigra L.), mais aussi les variétés de noyer cendré, de noyer de Perse ou de noyer anglais, de noyer de Hinds et de noyer de Californie.
Les noyers varient dans leur sensibilité au pathogène, mais même les arbres peu sensibles sont infectés lorsque les conditions optimales pour le pathogène fongique sont réunies. L'anthracnose du noyer est répandue dans le monde entier.
Symptômes
Les feuilles, les noix et, parfois, les pousses sont susceptibles d'être attaquées. De minuscules taches brun foncé ou noires, circulaires ou irrégulièrement circulaires, apparaissent sur les feuilles infectées. Ces taches deviennent plus nombreuses, s'élargissent et fusionnent souvent pour former des zones mortes encore plus grandes. Les tissus jaunâtres ou dorés des feuilles bordent généralement ces taches. Les feuilles et les folioles infectées tombent généralement prématurément, mais certaines folioles infectées restent attachées à l'arbre pendant la majeure partie de la saison.
La défoliation prématurée affecte la qualité et la croissance des fruits à coque. Les noix provenant d'arbres malades ont généralement une chair sombre, peu attrayante et ratatinée. Des taches nécrotiques enfoncées, plus petites que celles des feuilles, apparaissent sur le brou des noix infectées. Les noix qui deviennent malades lorsqu'elles sont immatures ne se développent pas normalement et beaucoup tombent prématurément. Les lésions apparaissent également sur les pousses actuelles, qui sont rarement attaquées, et forment des zones mortes et enfoncées, ovales à irrégulièrement circulaires, de couleur brun-gris clair avec des marges brun-rouge foncé.
Cycle de vie du champignon pathogène
Périthécie se forment en hiver à des températures entre 7°C et 10°C. Pour former les périthèces sexués, porteurs de spores, deux souches compatibles sont nécessaires. Dans chaque périthèce se développent de nombreux asques contenant chacun huit ascospores. Les ascospores sont déchargées Les spores se détachent du périthécium par temps humide au printemps et sont transportées par le vent jusqu'aux feuilles. La pluie est nécessaire pour la décharge et la dissémination des spores. La température optimale est de supérieure à 10°C. Le vent et les éclaboussures de pluie transportent les spores vers les nouvelles feuilles vertes, où les infections se produisent. Les symptômes apparaissent au début du mois de mai.
Les feuilles infectées présentent de petites fructifications asexuées noires (acervuli). A environ 18°C, la production de ces acervules est la plus élevée, ils produisent un grand nombre de conidies. Les conidies sont à l'origine de l'infection secondaire (en juin-automne). Des éclaboussures de pluie sont nécessaires et l'humidité libre doit rester à la surface des feuilles pendant plus de 6 heures. La température optimale pour l'infection est d'environ 21°C. Les symptômes apparaissent après 2 à 3 semaines d'incubation.
Dans des conditions défavorables (conditions sèches), les spores peuvent survivre quelques semaines. Le champignon pathogène hiverne dans les feuilles mortes (sous forme de périthèces) ou sur des rameaux de noyer (spores).
FieldClimate montre la probabilité d'infections et de libération d'ascospores dans des conditions favorables en fonction de la température, de la pluie et de l'humidité des feuilles.
Brûlure du noyer
La maladie bactérienne Xanthomonas arboricola pv. juglandisLa bactérie est appelée la brûlure du noyer. La bactérie passe l'hiver dans les bourgeons et les chatons infectés. Les bourgeons présentant les populations bactériennes les plus élevées sont les plus susceptibles de développer la maladie. Au début du printemps, les bactéries se propagent le long des pousses et des noix en développement. Il semble qu'il y ait très peu de propagation secondaire à d'autres pousses et arbres par les gouttes de pluie. Il en résulte des centres d'infection locaux au sein d'un arbre ou d'un verger. Des pluies fréquentes et prolongées, juste avant et pendant la floraison et pendant environ deux semaines après, provoquent de graves épidémies de mildiou dans ces centres d'infection locaux. C'est à ce moment-là que les fruits à coque sont les plus sensibles.
Symptômes
Sur les feuilles, l'infection apparaît d'abord sous forme de taches brun-rouge, sur les tiges sous forme de taches noires, légèrement déprimées, qui ceinturent souvent les pousses. Les jeunes bourgeons de feuilles et de chatons infectés deviennent brun foncé ou noirs et meurent rapidement. La maladie est grave sur les fruits à coque, où elle provoque des taches noires et visqueuses de taille variable. L'organisme pénètre dans l'enveloppe, la coquille et parfois la chair comestible. L'infection en fin de saison produit des anneaux noirs sur les coques.
La maladie bactérienne est favorisée par des saisons chaudes et modérées avec des températures de 10 à 28°C, des pluies légères et fréquentes avec des vents forts et des rosées. La dispersion locale est possible par les éclaboussures de pluie.
Maladie des taches foliaires
Alternaria alternata provoque des taches foliaires, des pourritures et des flétrissures sur une large gamme de plantes hôtes. Ce champignon fait partie des pathogènes opportunistes.
Symptômes
La tache alternarienne se présente sous la forme de taches brunes assez grandes sur les feuilles, d'un diamètre d'environ 12 à 18 mm. Le champignon produit des spores, qui sont visibles sous forme de taches noires. Les taches foliaires se développent le plus rapidement en juin et juillet, et les arbres peuvent être presque complètement défoliés au début de l'été lorsque la maladie est grave. La maladie semble être plus sévère là où la rosée se forme, où l'humidité est élevée et où l'air est stagnant.
La tache alternarienne peut se produire sur les amandiers cultivés partout dans la Central Valley, mais elle est rarement assez grave dans le nord de la San Joaquin Valley pour nécessiter un traitement. C'est dans le sud de la vallée de San Joaquin et dans le nord de la vallée de Sacramento qu'elle a été la plus grave.
Cycle de la maladie
Les spores asexuées du champignon sont à parois épaisses, multicellulaires et pigmentées et sont capables de tolérer des conditions défavorables comme le temps sec. Les spores sont produites sur les feuilles et, en plus petit nombre, sur les fruits et les rameaux qui restent sur l'arbre ainsi que sur la litière de feuilles. Lorsqu'il n'y a pas de tissus sensibles disponibles, comme pendant l'hiver, le champignon survit sur les feuilles matures, les rameaux et les fruits. La production de spores est maximale lorsque l'humidité relative est supérieure à 85%. Les spores sont transportées par l'air et leur libération dans l'air est déclenchée par précipitations ou par un changement brutal de l'humidité relative. Une fois libérées, les spores sont transportées par le vent vers des tissus sensibles qu'elles peuvent infecter. Lorsque les températures sont favorables 20-29°CLa durée de la période d'humectation nécessaire à l'infection est d'environ 8 à 10 heures. Lorsque les températures descendent en dessous de 17°C ou montent au-dessus de 32°C, le champignon a besoin d'une longue période d'humidité des feuilles (>24 heures) pour provoquer des infections significatives.
Sur les cultivars très sensibles, il suffit de 6 heures d'humidité des feuilles pour provoquer des infections. La plupart des infections suivent probablement un épisode de pluie, mais la rosée peut suffire à provoquer l'infection. Par exemple, en Israël et en Espagne, il pleut peu après la chute des pétales, mais il peut y avoir une infection importante à la suite de la chute des pétales. de lourdes rosées.
Modèles de maladies
Le modèle de la maladie provient de UC IPM.
Le modèle calcule un valeur de la gravité de la maladie (DSV) par jour (modèle similaire au TomCast dans Tomato).
Les valeurs de gravité de la maladie dépendent de la température moyenne pendant les périodes d'humidité des feuilles au cours d'une journée. L'application de fongicides est recommandée en cas d'apparition d'un une valeur d'indice cumulée de 10 DSV ou plus est atteinte sur une période de 7 jours.
TEMPÉRATURES MOYENNES
Dans certains vergers, la résistance d'Alternaria sp. aux fongicides inhibiteurs de la quinone extérieure (QoI) (également connus sous le nom de strobilurines) et aux fongicides inhibiteurs de la succinate déshydrogénase (SDHI) a été documentée ; ne pas utiliser les fongicides des groupes 7 ou 11 du mode d'action du FRAC dans ces vergers.
Gestion
La maladie apparaît en premier et est plus grave sur les feuilles exposées. Les arbres formés pour avoir une canopée ouverte et étalée ont généralement une tache alternarienne plus grave. Les arbres plantés en rangs est-ouest présentent également une maladie plus grave que les vergers plantés en rangs nord-sud. Les variétés les plus sensibles sont Carmel, Sonora, Monterey, Winters et Butte. Surveiller les signes de la maladie d'avril à juin. Si la surveillance indique la présence d'Alternaria, commencer les traitements de fin de printemps vers la mi-avril. Dans les vergers ayant des antécédents de maladie, traiter entre la mi-avril et la fin avril, puis 2 à 3 semaines plus tard.
Source :
- Dewdney M. M. (2013). Alternaria Brown Spot- Document PP152, d'une série du département de pathologie végétale, Florida Cooperative Extension Service, Institute of Food and Agricultural Sciences, University of Florida. Date de publication originale : juillet 2001. Révisé en mai 2008. Révisé en juin 2013. Visitez le site web d'EDIS à l'adresse Edis.
- Adaskaveg J. E., Gubler W. D., Duncan R., Stapleton J. J., Holtz B. A. (2012) UC IPM Pest Management Guidelines : Almond ; UC ANR Publication 3431. Cette page.
Pourriture brune
La pourriture brune, causée par Monilia spp. (Monilia laxa, Monilia fructigena et Monilia fructicola) sont parmi les maladies les plus destructrices en Europe.
Symptômes
Les fleurs peuvent être infectées depuis le bouton rose jusqu'à la chute des pétales et sont plus sensibles lorsqu'elles sont complètement ouvertes. Chez les amandes, les stigmates, les anthères et les pétales sont tous très sensibles à l'infection.
Les symptômes de la maladie de la pourriture brune sont la brûlure de la fleur de cerisier ainsi que l'extrémité verte des rameaux en raison de la pénétration du pathogène dans la fleur ouverte à travers le stigmate des pistils ou des anthères. Il en résulte généralement un flétrissement de toute la partie d'un rameau âgé d'un an. Les feuilles commencent à pendre, puis deviennent brunes et rigides, mais ne tombent généralement pas sur le sol, elles restent sur l'arbre jusqu'au printemps de l'année suivante. Parfois, surtout dans des conditions humides, des gouttelettes de gomme sont visibles, qui sont des symptômes de la colonisation du champignon ainsi que des chancres établis. En cas d'humidité élevée, des masses de spores grises à bronzées se forment sur les parties florales malades et les chancres des rameaux.
Les fruits infectés sont recouverts de taches putréfiées, d'où apparaissent des sporodochies verruqueuses (hyphe) avec des conidies de la forme "été". De plus, à la fin de l'automne et en hiver, le champignon produit des sporodochies de la forme "hiver" sur les rameaux infectés. Avec le temps, les fruits sévèrement affectés se momifient. Le mycélium qui se développe dans ces momies s'agrège progressivement en sclérotes. Ces fruits restent sur l'arbre pendant l'hiver.
La température et la durée de l'humidité sont des facteurs environnementaux importants, qui déterminent l'incidence de l'infection des M. laxa sur les fleurs de cerisier. Monilia laxa est bien adapté à la des températures relativement basses au printemps et provoque des infections à des températures aussi basses que 5°C dans une période très courte de durée d'humectation. L'infection de la fleur active par le stimulus n'a pas besoin d'une durée d'humectation très longue. Humidité des feuilles n'est nécessaire que pour la germination des conidies. Par conséquent, l'infection des jeunes fruits nécessite des périodes d'humidité foliaire plus longues. Pour infecter les jeunes fruits, un appressoria doit être formé et l'humidité libre est nécessaire pour créer la pression nécessaire à la formation de la cheville d'infection qui pénètre dans la cellule de l'épiderme. Avec la maturité des fruits, de petites cicatrices sur les fruits permettent à nouveau une infection sans appressoria et la durée d'humidification des feuilles devient plus courte.
Aucune sporulation n'est possible si l'humidité relative ne dépasse pas 85% rel. humidity.
Modèle pourriture brune en FieldClimate
Calcule les infections faibles et graves. Infections faibles sont modélisés pour les conditions d'infection stades très sensibles comme les fleurs et les fruits blessés proches de la maturité. Pour infecter ces tissus, de très courtes périodes d'humidité des feuilles se sont avérées suffisantes.
Plusieurs études, par exemple : "Phenological Analysis of Brown Rot Blossom Blight of Sweet Cherry Caused by Monilinia laxa" (L. Tamm, Chr. E. Minder, et W. Flickiger ; 1994) ou "Effects of wounding, fruit age and wetness duration on the development of cherry brown rot in the UK.". ( X.-M. Xu*, C. Bertone et A. Berrie ;2003) ont confirmé les faibles périodes d'humidité nécessaires aux infections. Plus loin, les fruits immatures sont plus résistants aux infections, mais à proximité de la maturité, ils deviennent plus sensibles et les conditions pour des infections sévères sont données.
Les modèles de dispersion printanière de Monilinia laxa conidies dans les abricotiers, les pêchers, les pruniers et les amandiers. Journal canadien de botanique (1974), 52 : 167-176
Modélisation du climat sur le terrain : Il est probable que le temps nécessaire à l'infection pendant la floraison doit être raccourci. C'est pourquoi le modèle réduit les infections dans la zone de 2000 à 4800 degrés-heure au-dessus de 5°C.
Le premier graphique montre un modèle pour la Styrie en 2010, qui indique une faible infection le 6 avril. A cette époque, le cerisier commence à fleurir. Cette infection peut déjà conduire à des infections latentes des fruits, ce qui causerait de graves dommages. Les fleurs tardives seront complètement détruites par les infections entre la mi-avril et la fin avril. Les infections graves sont déterminées le 6 avril en raison des longues périodes d'humidité et des températures supérieures à 5 à 15°C.
Rouille sur amande
La rouille est causée par le champignon pathogène Tranzschelia discolor.
Symptômes
Les symptômes courants de la maladie sont les chancres des rameaux, les lésions des feuilles et les lésions des fruits. Tous les symptômes ne se développent pas nécessairement au cours de chaque saison de croissance.
Chancres des rameaux
Les chancres des rameaux sont les premiers symptômes au printemps. Ces chancres se développent après la chute des pétales au printemps, pendant le développement des fruits, sur du bois âgé d'un an. Les symptômes se présentent sous la forme de cloques et de fissures longitudinales dans l'écorce. L'infection commence par des lésions imbibées d'eau, qui gonflent et rompent le tissu épidermique du rameau. Les chancres se trouvent généralement sur la partie supérieure, rougeâtre, du rameau. Quelques jours plus tard (en fonction de la température), les chancres mûrissent et produisent des masses poudreuses brun rouille de spores spécialisées (urédospores). Ces urédiniospores sont épineuses et fortement rétrécies à la base. A la fin de la saison, de vieux chancres peuvent encore être observés, ils peuvent persister pendant la saison suivante mais ils ne produisent plus de spores viables.
Lésions des feuilles
Les lésions foliaires se développent généralement après la formation des chancres au printemps et peuvent se poursuivre jusqu'à l'automne. Une défoliation peut se produire lorsqu'un grand nombre d'infections se trouvent sur une seule feuille. Les feuilles infectées sont d'abord proches des chancres des rameaux (source de l'infection). Les lésions se développent sous forme de taches vertes jaunâtres pâles visibles sur les deux faces de la feuille. Les lésions deviennent jaune vif, anguleuses et avec l'âge nécrosées au centre. Sur la face inférieure des feuilles, on peut trouver de nombreuses pustules de spores (urédos). Elles deviennent brun-rouille en raison de la production de masses poudreuses d'urédospores. En fin de saison, les lésions foliaires deviennent marron foncé à noires et produisent des téleutospores bicellulaires. Ces lésions foliaires sont de forme angulaire, de petite taille et de couleur brun rouille.
Lésions des fruits
Les lésions des fruits se développent au cours de la saison de croissance après les symptômes des feuilles. On observe d'abord des taches brunâtres avec des auréoles vertes sur des fruits matures et jaunes. Lorsque les fruits rougissent, les halos deviennent jaune verdâtre. De nombreuses infections se développent sur chaque fruit et peuvent conduire à des infections secondaires par d'autres pathogènes fongiques comme Monilinia, Colletotrichum, Alternaria ou Cladosporium.
Agent pathogène
Le champignon pathogène s'attaque aux plantes du genre Prunus, notamment l'amande, l'abricot, la cerise, la pêche, la nectarine, la prune et le pruneau. Le champignon peut être distingué par des formes spéciales, basées sur l'hôte où il se trouve. Ces formes sont T. discolor f. sp. persicae sur pêcher, T. discolor f. sp. dulcis sur amandier, T. discolor f. sp. domesticae sur pruneau.
Le champignon a plusieurs stades de spores, qui se développent sur deux hôtes différents (hôtes alternatifs). Le seul hôte alternatif signalé en California est Anemone coronaria (Ranunculaceae). Les différents stades de spores sont les urédiniospores, les téleutospores, les basidiospores et les écidiospores. Seules les urédiniospores et les téleutospores sont trouvées sur Prunus sp.
Les urédospores unicellulaires, brun rouille, sont produites sur le pêcher et peuvent réinfecter les pêches. Cette infection secondaire ainsi que la production de spores et la réinfection provoquent des dégâts épidémiques sur le pêcher. Les téliospores, qui se développent tard dans la saison sur le pêcher, ne sont pas capables de réinfecter le pêcher. Après avoir passé l'hiver, les téliospores germent et produisent des basidiospores qui infectent l'hôte alternatif.
Les écidiospores produites sur A. coronaria infectent seulement Prunus spp. et l'infection produit le premier cycle d'urédiniospores au printemps. A. coronaria est rare dans les vergers de fruits à noyaux et n'est probablement pas la source de la première infection dans les vergers.
Le champignon passe probablement l'hiver sous forme de mycélium dans le bois fruitier infecté de l'été ou de l'automne précédent. Au printemps, ces infections se transforment en chancres des rameaux, qui sont la source de l'inoculum primaire chaque année. Les urédospores des chancres des rameaux infectent les feuilles, où davantage de spores sont produites dans les lésions et, dans des conditions favorables, la maladie devient épidémique.
Références :
- Adaskaveg JE, Soto-Estrada, A, Förster, H, Thompson, D, Hasey, J, Manji, BT, Teviotdale, B. (2000) Peach rust caused by Tranzschelia discolor in California. Université de Californie. Agriculture et ressources naturelles.
Conditions pour une infection - Sortie en FieldClimate
Les urédospores sont dispersées par le vent et les précipitations. Ils germent sur une large température de 5°C à 30°C avec une plage de température optimale de 10-25°C. La viabilité de l'inoculum et humidité sont des facteurs importants pour déterminer les périodes d'infection.
Les infections des feuilles et des rameaux peuvent se produire sur une large gamme de périodes d'humidité (12 à 36 heures) et de températures (15 à 25°C). En conditions contrôlées, la durée d'humidité et la température optimales pour l'infection étaient de 18 à 36 heures à une température de 15 à 20°C. La période d'incubation après l'infection est de 8 à 10 jours, tandis que la période d'incubation des symptômes sur les rameaux est de 4 à 6 semaines à 20°C.
Équipement recommandé
Vérifiez quel jeu de capteurs est nécessaire pour surveiller les maladies potentielles de cette culture.
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