Hastalık Modelleri - ayçiçeği

Ayçiçeği hastalık modelleri

DOWNY MILDEW -
Plasmopara halstedii

SCLEROTINIA MODELI -
S. sclerotiorum

GRİ KALIP -
Botrytis cinerea

TomCast -
Alternaria

Önerilen ekipman

Tüylü küf

Ayçiçeklerinde Tüylü küfe neden olan mantar şu isimlerle bilinir Plasmopara halstedii veya Plasmopara helianthi. Fungal patojen kompleksi, yabani ve kültür türleri de dahil olmak üzere Asteraceae familyasındaki çok çeşitli cinsleri enfekte eder. Helianthus. Hastalık ayçiçeğinin yetiştirildiği her yerde mevcuttur.

Yaşam Döngüsü

Çimlenen ve bir zoosporangium meydana getiren tek bir oospordan başlayarak, zoospor farklılaşması ve salınımı gelişimin sonraki adımlarıdır. Serbest su varlığında, zoosporlar eğer mevcutsa kısa sürede enfeksiyon bölgelerine (kök, hipokotil) hareket eder. Enkistment ve germ tüpü uzamasını takiben (ikincisi genellikle bir konak hücreye karşı bir appressorium ile sonlanır) fungus doğrudan penetrasyon için bir enfeksiyon yapısı (enfeksiyon peg) geliştirir. Deneysel koşullar altında, germ tüplerinin genellikle suda appressoria oluşturmadığı, ancak bunu konak hücrelerinin varlığında yaptığı gösterilmiştir (Gray ve ark., 1985). Penetrasyondan sonra, fungus hücre içi ve daha sonra hücreler arası büyür ve bir kez duyarlı bir konukçuya (uyumlu) yerleştikten sonra, tercihen sürgün tepesine doğru ve daha az ölçüde kök yönünde büyüyerek tüm bitkiyi sistemik olarak kolonize etmeye başlar. Koşullar uygun olduğunda, etkilenen yapraklarda ve bazen de toprak altı dokularda eşeysiz sporlanma gerçekleşir. Tamamen gelişmiş sporangia rüzgarla yayılır ve kısa ömürlü olduklarından ve kuraklığa ve doğrudan güneş ışığına duyarlı olduklarından, hayatta kalmaları mevcut hava durumuna bağlıdır. Oosporlar ayrıca enfekte olmuş bitki kısımlarında, özellikle kök ve alt gövde dokularında üretilirken, tohumlar hariç yapraklar ve üst bitki kısımlarında bu dinlenme sporları bulunmaz (Sackston, 1981; Virányi, 1988; Onan ve Onogur, 1991). Konukçu gelişiminin en duyarlı aşaması çimlenme ve çıkış arasındadır (Meliala et al. 2000).

Hayatta Kalma ve İnokulum Kaynağı

Birincil enfeksiyonla ilgili olarak, P. halstedii toprak kaynaklı bir patojendir. Oosporları genç ayçiçeği fidelerinin yeraltı dokularına birincil inokulum olarak hizmet eder. Ayrıca rüzgarla da taşınarak yapraklarda ve/veya çiçek salkımında ikincil enfeksiyona neden olabilir. Eğer ikinci durum söz konusuysa, fungus tohum kaynaklı da olabilir: etkilenen tohumlar miselyum ve/veya oosporları içlerinde taşır. Oosporlar esas olarak küflenmiş bitkilerin kök ve alt gövde dokularında, görünür semptomlar olsun ya da olmasın gelişir ve önceki ayçiçeği mahsulünün bitki kalıntılarıyla birlikte toprağa karışır. Oosporlar uzun ömürlüdür ve en az 6-8 yıl boyunca hayatta kalabilirler (Sackston, 1981; Virányi, 1988). Genel olarak oosporların çoğunlukla ıslak koşullar altında çimlendiği düşünülmektedir. Ancak şimdiye kadar çimlenme dinamikleri hakkında sadece birkaç sonuç elde edilebilmiştir. Islaklıktan önce düşük sıcaklık şokunun ve kökler tarafından salınan konukçu eksudatlarının varlığının çimlenme sürecini artırdığı gösterilmiştir (Delanoe, 1972). Başka bir raporda (Spring & Zipper 2000), böyle bir sıcaklık etkisi gözlemlenememiş ve yeni gelişmiş oosporların 10-30 günlük bir süre içinde, ancak oldukça değişken bir oranda (1-17%) suda kendiliğinden çimlendiği bildirilmiştir.

Bununla birlikte, ikincil enfeksiyon, uygun çevresel koşullar altında belirli bölgelerde hastalığın yayılmasında önemli bir faktör olarak kabul edilmektedir. Çiçek salkımının ikincil enfeksiyonunun tohumlarda gizli enfeksiyona yol açabileceği gerçeğinin yanı sıra P. halstedii (Sackston, 1981), lokal yaprak lezyonlarından fungus ilerleyebilir ve gövdeye doğru büyüyerek sistemik enfeksiyona neden olabilir (Spring 2001).

Epidemiyoloji

İnokulumun doğası (oospore veya zoospore), hava değişkenleri (bağıl nem, sıcaklık), enfeksiyon bölgesi (doku yaşı) ve çeşit reaksiyonu, enfeksiyon sürecini, hastalık insidansını ve şiddetini etkileyen veya belirleyen faktörlerdir. Eşeyli ya da eşeysiz sporülasyondan kaynaklanan zoosporlar, canlılıklarını korumak ve enfeksiyon bölgelerine doğru hareket edebilmek için serbest suya ihtiyaç duyarlar. Sonuç olarak, yağış veya yoğun sulama enfeksiyonun başlaması için bir ön koşul olacaktır. Ekimden sonraki ilk iki hafta boyunca yeterli yağmur veya buna karşılık gelen su kaynağı olması durumunda, topraktan birincil enfeksiyon insidansının arttığı çeşitli çalışmalarla gösterilmiştir. Bununla birlikte, enfeksiyonu destekleyen zaman süresi nispeten kısadır ve duyarlı ayçiçekleri bile yaşla birlikte dirençli hale gelir (Sackston, 1981). Tourvieille ve arkadaşları (2008a), ayçiçeği fideleri en duyarlı aşamadayken şiddetli yağış olması durumunda tüylü küf saldırısı riskinin en yüksek olduğunu, ekimden önce veya çıkıştan sonra şiddetli yağışın hastalıklı bitkilerin yüzdesi üzerinde bir etkisi olmadığını bulmuştur. Göre (2009), Marmara Bölgesi'nde düşük sıcaklık ve yoğun ilkbahar yağışlarının ayçiçeği üretiminde yaklaşık 85% verim kaybına ve daha düşük kaliteye neden olduğunu belirtmiştir. Çevresel koşulların yanı sıra, hastalık yoğunluğu patojen popülasyonunun saldırganlığından da etkilenebilir. Sakr ve arkadaşları (2009), popülasyonun latent dönemine ve sporülasyon yoğunluğuna dayanarak iki patojen suşunu saldırganlıkları açısından ayırt edebilmişlerdir.

Tohum Kaynaklı Yönler

P. halstedii doğal olarak enfekte olmuş bitkilerden elde edilen ayçiçeği tohumlarında miselyum ya da oospor olarak bulunmuştur (Novotel'nova, 1966). Doken (1989) miselyumun sadece testa ve perikarpın iç tabakasında bulunduğunu; embriyoda bulunmadığını bildirmiştir. Yapay aşılamanın ardından, Cohen ve Sackston (1973) ayçiçeği tomurcuklarının P. halstedii sistemik olarak enfekte olmuş ve enfekte tohumlar üretmiştir. Tarlada aşılanmış ve doğal olarak enfekte olmuş bitkilerin tohumlarında oosporlar gözlenmiştir. Tohum enfeksiyonuna ilişkin diğer kayıtlar İran (Zad, 1978), Türkiye (Döken, 1989) ve Almanya'dan (Spring, 2001) bilinmektedir. Fungus genellikle ovaryum ve perikarpı istila eder ancak embriyoya doğru büyümede başarısız olur (Novotel'nova, 1966; Döken, 1989). Tohum enfeksiyonu, sistemik olarak enfekte olmuş bitkilerde çiçeklenme aşamasına kadar hayatta kalırlarsa düzenli olarak meydana gelir. Bu gibi durumlarda, embriyo gelişimi genellikle gecikir veya engellenir. Dahası, bu tür bitkiler cüce olur ve nadiren hasat edilir. Bir tarladaki yerel oospor stokunu artırabilirler, ancak patojenin tohum kaynaklı uzun mesafeli yayılımı için geç enfekte olmuş semptomsuz bitkilerden elde edilen tohumlardan daha az önemli görünmektedirler (Spring, 2001). İkinci tür enfeksiyon çiçeklenme sürecindeki hava koşullarına çok bağlıdır. Bu nedenle kurak yıllarda patojenle kontamine olmuş tohumların sayısı çok düşüktür ve binde birkaçı geçmeyebilir, ancak Haziran/Temmuz aylarında serin ve nemli bir dönemden sonra çok daha yüksek olabilir. Örneğin, Spring (2001) Almanya'daki bir tarladan elde edilen tohumların 10%'sinin kontamine olduğunu bulmuş ve Döken (1989) uygun deneysel koşullar altında incelenen tohumların 28%'sinde fungal yapılar gözlemlemiştir.

Tohum Kalitesi Üzerine Etkisi

Tüylü mildiyö hastalığına yakalanmış bitkilerde üretilen ayçiçeği tohumları ya az gelişmiş, renksiz ya da nadiren sağlıklı görünürler. İkinci durumda bile, bu tür enfekte tohumların kalitesi düşüktür; anormal fideler üretirler ve çimlenme oranı düşüktür (Döken, 1989).

Daha fazla bilgi için ana sayfasına bir göz atın CABI.

FieldClimate modelinde

Kullanılmış sensörler: toprak sıcaklığı, yağış, yaprak ıslaklığı, hava sıcaklığı ve bağıl nem.

Enfeksiyon ilerlemesini hesaplamaya, sıcaklık 6 ila 32°C arasında, optimum 18 ila 24°C arasında ve toprak sıcaklığı 10°C'nin üzerinde olduğunda başlarız. Ayrıca ıslak koşullar hastalık için elverişlidir (yağmur olayı, 70%'nin üzerinde bağıl nem).

Makrosporangia 10°C'nin üzerindeki toprak sıcaklıklarında ve yağışta (70%'den fazla bağıl nem) oluşur. Bağıl nem 50%'nin altına düşerse sıfırlanır.

Makrosporangia tamamen gelişmişse - toprak enfeksiyonu veya hava enfeksiyonu (grafikte birincil enfeksiyon olarak adlandırılır) için hesaplamalar başlar (yaprak ıslaklığı koşulları altında).

Sporangia nemli koşullarda (95% r.h.'den fazla), karanlıkta ve 12°C'nin üzerindeki sıcaklıklarda oluşur. Sıfırlama gün boyunca ve sporangia tam olarak gelişmediğinde gerçekleşir.

Sporangia tam olarak gelişmişse, ikincil enfeksiyonun hesaplanması hava sıcaklığına bağlı olarak başlar.

Grafikte Nisan sonunda makrospor oluşumuna ve toprak enfeksiyonuna (birincil kök enfeksiyonu) yol açan uzun süreli nemli bir dönem görüyorsunuz. Hava enfeksiyonu (burada birincil enfeksiyon olarak adlandırılır) Mayıs ayının ilk günü tespit edilememiştir, ancak koşullar elverişli olduğu için 2 Mayıs'ta tespit edilmiştir. Ayçiçeği fideleri o dönemde hassas bir aşamada ise (yeni ekilmiş) kontrol önlemleri dikkate alınmalıdır (profilaktik sistemik fungisitler, çoğunlukla fosforik asitler).

Referanslar:

  • Achbani EH, Lamrhari A, Serrhini MN, Douira A, Tourvieille de Labrouche D, 1999. Plasmopara halstedii'ye karşı tohum uygulamalarının etkinliğinin değerlendirilmesi. Bulletin OEPP, 29(4):443-449; 15 ref.
  • Achbani EH, Tourvieille D, 1993. Le tournesol au Maroc. Phytoma, 448:30-32.
  • Agrawal SC, Gupta RK, Prasad KVV, 1991. Madhya Pradesh'de ayçiçeğinde bir tüylü küf vakası. Yağlı Tohumlar Araştırma Dergisi, 8(1):126
  • Albourie JM, Tourvieille J, Labrouhe DTde, 1998. Ayçiçeği patojeni Plasmopara halstedii izolatlarında metalaxyl'e karşı direnç. European Journal of Plant Pathology, 104(3):235-242; 27 ref.
  • Albourie JM, Tourvieille J, Tourvieille de Labrouhe D, 1998. Fransız tüylü mildiyö izolatlarında metalaxyl direnci. İçinde: Gulya T, ed. Vear F, ed. Proc. Third Sunflower Downy Mildew Symposium, Fargo, USA: ISA, 235-242.
  • Bán R, Kovács A, Körösi K, Perczel M, Turóczi G, 2014. Macaristan'da Plasmopara halstedii'nin (ayçiçeği mildiyösü) yeni bir patotipi olan 714'ün ortaya çıkışına ilişkin ilk rapor. Plant Disease, 98(11):1580-1581.
  • Bán R, Kovács A, Perczel M, Körösi K, Turóczi G, 2014. Macaristan'da Plasmopara halstedii'nin 704 patotipinin artan dağılımı hakkında ilk rapor. Plant Disease, 98(6):844.
  • Batinica J, Bes A, Dimic N, Numic R, Radman L, Ristanovic M, Vaclav V, 1973. Bosna Hersek Cumhuriyeti'nde ayçiçeği ekim alanındaki zararlı fauna ve hastalıkların nedenlerinin bilinmesine bir katkı. Radovi Poljoprivrednog Fakulteta Univerziteta u Sarajevu, 21/22(24/25):203-210
  • Berlese AN, De-Toni JB, 1888. Phycomycetteae. İçinde: Sylloge fungorum, VII:242.
  • Bohár G, Vajna L, 1996. Macaristan'da Ambrosia artemisifolia var. elatior (L.) Descourt. için patojen olan mikroskobik mantarların oluşumu. Növényvédelem, 32:527-528.
  • Borovkov AY, McClean PE, 1993. Plasmopara halstedii genomundan tandem olarak tekrarlanan bir dizi. Gene, 124(1):127-130
  • Borovkova IG, Borovkov AY, McClean PE, Gulya TJ, Vick BA, 1992. Ayçiçeğinin tüylü küf mantarı Plasmopara halstedii'nin DNA'sında restriksiyon parça uzunluğu polimorfizmleri ve RAPD belirteçleri. Proceedings of the 13th International Sunflower Conference Volume 2, Pisa, Italy, 7-11 September 1992. 1420-1425; 9 ref.
  • Bouterige S, Robert R, Bouchara JP, Marot-Leblond A, Molinero V, Senet JM, 2000. Plasmopara halstedii için spesifik iki monoklonal antikorun üretimi ve karakterizasyonu. Applied and Environmental Microbiology, 66(8):3277-3282; 33 ref.
  • Bouterige S, Robert S, Marot-Leblond A, Senet JM, 2000. Tohumdaki Plasmopara halstedii antijenlerini tespit etmek için bir ELISA testinin geliştirilmesi. İçinde: Proc. 15th Int. Ayçiçeği Konferansı Toulouse, Fransa: ISA (F):44-49.
  • CABI/EPPO, 1998. Avrupa için karantina zararlılarının dağılım haritaları (Smith, I. M. ve Charles, L. M. F. tarafından düzenlenmiştir). Wallingford, Birleşik Krallık: CAB International, xviii + 768 s.
  • CABI/EPPO, 2014. Plasmopara halstedii. Dağılım haritası. Bitki Hastalıklarının Dağılım Haritaları, No.Ekim. Wallingford, Birleşik Krallık: CABI, Harita 286 (Baskı 6).
  • Choi YJ, Park MJ, Shin HD, 2009. Coreopsis lanceolata'da Plasmopara halstedii'nin neden olduğu tüylü küfün ilk Kore raporu. Bitki Patolojisi, 58(6):1171.
  • CMI, 1988. Bitki hastalıklarının dağılım haritaları. Harita No. 286. Wallingford, Birleşik Krallık: CAB International.
  • Cohen Y, Sackson WE, 1974. Plasmopara halstedii tarafından ayçiçeğinin tohum enfeksiyonu ve latent enfeksiyonu. Canadian Journal of Botany, 52:231-238.
  • Delanoe D, 1972. Biologie et epidemiologie du mildiou du tournesol (Plasmopara helianthi Novot.). CETIOM Informations Techniques, 29:1-49.
  • Delen N, Onogur E, Yildiz M, 1985. Altı Plasmopara helianthi Novot. izolatında metalaxyl'e karşı duyarlılık düzeyleri. Türk Fitopatoloji Dergisi, 14(1):31-36
  • Delos M, Penaud A, Lafon S, Walser P, De Guenin MC, Tourvieille J, Molinero V, Tourvieille D, 1997. Le mildiou de tournesol - Une maladie toujours d'actualitT. Phytoma, 495á:15-16.
  • Doken MT, 1989. Ayçiçeği tohumlarında Plasmopara halstedii (Farl.) Berl. et de Toni ve enfekteli tohumların sistemik semptomlu bitki üretimindeki rolü. Journal of Phytopathology, 124(1-4):23-26
  • Duarte LL, Choi YJ, Barreto RW, 2013. Brezilya'da Gerbera jamesonii üzerinde Plasmopara halstedii'nin neden olduğu tüylü küfün ilk raporu. Bitki Hastalıkları, 97(10):1382.
  • EPPO, 2014. PQR veritabanı. Paris, Fransa: Avrupa ve Akdeniz Bitki Koruma Örgütü.
  • Avrupa ve Akdeniz Bitki Koruma Örgütü, 2008. Plasmopara halstedii. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin, 38(3):343-348.
  • Garcia GM, Gulya TJ, 1991. Kuzey Dakota ve Minnesota'da ayçiçeği tüylü küf ırk dağılımı. İçinde: Proceedings of the 1991 Sunflower Research Workshop, Fargo, USA: National Sunflower Association, 3-5.
  • Giresse X, Labrouhe DTDe , Richard-Cervera S, 2007. Ayçiçeği mildiyösü etkeni Plasmopara halstedii için on iki polimorfik eksprese dizi etiketi türevi markör, 7:1363-1365.
  • Göre ME, 2009. Türkiye'nin Marmara bölgesinin bir parçası olan Trakya'da ayçiçeğinde Plasmopara halstedii'nin neden olduğu tüylü mildiyö salgınları. Bitki Patolojisi, 58(2):396.
  • Gray AB, Sackston WE, Thauvette L, 1985. Ayçiçeği hücrelerinin süspansiyonlarında Plasmopara halstedii'nin enfeksiyon yapılarının gelişimi. Canadian Journal of Botany, 63(10):1817-1819
  • Gray B, Sackston WE, 1983. Plasmopara halstedii ile inokule edilmiş ayçiçeğinin doku kültürleri ve hücre kültürleri üzerinde çalışmalar. Canadian Journal of Plant Pathology, 5:206.
  • Greathead DJ, Greathead AH, 1992. Böcek zararlılarının böcek parazitoidleri ve predatörleri tarafından biyolojik kontrolü: BIOCAT veri tabanı. Biocontrol News and Information, 13(4):61N-68N.
  • Gullino ML, Garibaldi A, 1988. Başlıca saksıda yetiştirilen çiçek bitkilerinin kriptogamöz hastalıkları. Panorama Floricolo, 13(5):4-8.
  • Gulya TJ, 1995. Tüylü küfe "dayanıklı" ayçiçeği hatlarının kök tepkisini değerlendirmek için basit bir yöntem. İçinde: Proceedings of the 17th Sunflower Research Workshop, Fargo, USA: National Sunflower Association, 63-66.
  • Gulya TJ, 1995. Ayçiçeği mildiyösü ırklarının sınıflandırılması için gözden geçirilmiş bir sistem önerisi. İçinde: Proceedings of the 17th Sunflower Research Workshop, Fargo, USA: National Sunflower Association, 76-78.
  • Gulya TJ, 1996. Kuzey Büyük Ovalar'da ayçiçeği hastalıkları. İçinde: Proceedings of the 18th Sunflower Research Workshop, Fargo, USA: National Sunflower Association, 24-27.
  • Gulya TJ, 2000. Ayçiçeği mildiyösünde metalaxyl direnci ve genetik ve alternatif fungisitlerle kontrol. İçinde: Proc. 15th Int. Ayçiçeği Konferansı Toulouse, Fransa: ISA (G):16-21.
  • Gulya TJ, 2007. Ayçiçeğindeki Plasmopara halstedii ırklarının dünya çapında dağılımı, 3:121-134.
  • Gulya TJ, Rashid KY, Masirevic SM, 1997. Ayçiçeği Hastalıkları. İçinde: Schneiter AA, ed. Ayçiçeği Teknolojisi ve Üretimi. Agronomi serisinin 35. sayısı. Wisconsin, ABD: Amer. Soc. Agronomy, 263-379.
  • Gulya TJ, Sackston WE, Viranyi F, Masirevic S, Rashid KY, 1991. Avrupa ile Kuzey ve Güney Amerika'da ayçiçeği mildiyösü patojeninin (Plasmopara halstedii) yeni ırkları. Journal of Phytopathology, 132(4):303-311
  • Gulya TJ, Tourvieille de Labrouhe D, Masirevic S, Penaud A, Rashid K, Viranyi F, 1998. Plasmopara halstedii (ayçiçeği mildiyösü) ırklarının standartlaştırılmış isimlendirilmesi ve tanımlanması için öneri. İçinde: Gulya T, ed. Vear F, ed. Üçüncü Ayçiçeği Tüylü Küf Sempozyumu. Fargo, ABD: ISA, 130-136.
  • Gulya TJ, Virányi F, Nowell D, Serrhini MN, Arouay K, 1996. Avrupa ve Afrika'dan yeni ayçiçeği mildiyösü ırkları. İçinde: Proceedings of the 18th Sunflower Research Workshop, Fargo, USA: National Sunflower Association, 181-184.
  • Gulya TJ, Woods DM, Bell R, Mancl MK, 1991. Kaliforniya'da ayçiçeği hastalıkları. Bitki Hastalıkları, 75(6):572-574
  • Hall G, 1989. Bitki patojeni Oomycetes'lerin olağandışı veya ilginç kayıtları. Bitki Patolojisi, 38(4):604-611
  • Harmon PF, Dunkle LD, Latin R, 2003. Enfekte çok yıllık çavdardan Magnaporthe oryzae'nin tespiti için hızlı bir PCR tabanlı yöntem. Bitki Hastalıkları, 87(9):1072-1076.
  • Heller A, Rozynek B, Spring O, 1997. Ayçiçeğinde Plasmopara halstedii'nin neden olduğu latent enfeksiyon tipinin sitolojik ve fizyolojik nedenleri. Journal of Phytopathology, 145(10):441-445; 15 ref.
  • Henning AA, Franca Neto JB, 1985. Brezilya'da tüylü küfe (Plasmopara halstedii (Farl.) Berlese et de Toni) karşı fizyolojik ırk ve direnç kaynakları. İçinde: Proceedings of the 11th International Sunflower Conference, Mar del Plata, Argentina: Volume 2, 407-409.
  • Hong CX, 2006. Virginia'da Plasmopara halstedii tarafından Rudbeckia fulgida cv. Goldsturm'un tüylü küfü. Bitki Hastalıkları, 90(11):1461. HTTP://www.apsnet.org
  • Hua Z, Ma G, 1996. Çin'de ayçiçeği hastalıkları araştırmaları üzerine bir inceleme. İçinde: Proceedings of the 14th International Sunflower Conference, Beijing, China: ISC-LAAS, 754-759.
  • Intelmann F, Spring O, 2002. Plasmopara halstedii'de popülasyon çalışmalarında kullanılmak üzere total DNA'nın minisatellit ve basit dizi tekrar primerleri ile analizi. Canadian Journal of Microbiology, 48(6):555-559; 25 ref.
  • IPPC, 2010. Plasmopara halstedii'nin Birleşik Krallık'taki ilk bulgusu. IPPC Resmi Zararlı Raporu, No. GBR-23/1. Roma, İtalya: FAO.
  • Jardine DJ, Gulya TJ, 1994. Kansas'ta ayçiçeklerinde Plasmopara halstedii'nin neden olduğu tüylü küfün ilk raporu. Bitki Hastalıkları, 78(2):208
  • Kinga R, Bíró J, Kovács A, Mihalovics M, Nébli L, Piszker Z, Treitz M, Végh B, Csikász T, 2011. Macaristan Büyük Ovası'nın Güneydoğu bölgesinde yeni bir ayçiçeği mildiyösü ırkının ortaya çıkışı. (Újabb napraforgó-peronoszpóra rassz megjelenése Magyarországon, a Dél-kelet Alföldi régióban.) Növényvédelem, 47(7):279-286.
  • Kola K, 1980. Zadrima bölgesinde mantar hastalıklarına karşı dirençlerini değerlendirmek için ayçiçeği çeşitlerinin karşılaştırmalı çalışması. Buletini i Shkencave Bujqesore, 19:87-94.
  • Komjáti H, Walcz I, Virányi F, Zipper R, Thines M, Spring O, 2007. Xanthium strumarium'dan izole edilen bir Plasmopara angustiterminalis izolatının özellikleri. European Journal of Plant Pathology, 119(4):421-428.
  • Kucmierz J, 1976. Plasmopara helianthi Novot., Polonya için yeni bir mantar türü. Fragmenta Floristica et Geobotanica, 22(3):373-375
  • Labrouhe DDe , Walser P, Serre F, Roche S, Vear F, 2008. İlkbahar yağışları ve Plasmopara halstedii (tüylü mildiyö) tarafından ayçiçeği enfeksiyonu arasındaki ilişkiler. Cordoba, İspanya, 8-12 Haziran 2008. İçinde: Proceedings of the 17th International Sunflower Conference Vol ed. by Velasco, L.. Saville, İspanya: Tarım ve Balıkçılık Konseyi, 97-102.
  • Lafon S, Penaud A, Walser P, De Guenin M-Ch, Molinero V, Mestres R, Tourvieille D, 1996. Le mildiou du tournesol toujour sou surveillance. Phytoma, 484:35-36.
  • Leite RMVBde C, Henning AA, Rodrigues SR, Oliveira MFde, 2007. Brezilya'da Plasmopara halstedii'nin tespiti ve değişkenliği ve ayçiçeği genotiplerinin tüylü küfe karşı direnci. (Detecção e variabilidade de Plasmopara halstedii no Brasil e avaliação da resistência de genótipos de girassol ao míldio.) Summa Phytopathologica, 33(4):335-340.
  • Leppik EE, 1966. Compositae'de Plasmopara halstedii kompleksinin kökeni ve uzmanlaşması. FAO Bitki Koruma Bülteni, 14:72-76.
  • Liese AR, Gotlieb AR, Sackston WE, 1982. Ayçiçeğinde tüylü küfün (Plasmopara halstedii) tespiti için enzime bağlı immünosorbent testinin (ELISA) kullanımı. İçinde: Proceedings of the 10th International Sunflower Conference, Surfers Paradise, Australia, 173-175.
  • Ljubich A, Gulya TJ, 1988. Kotiledon sınırlı sistemik tüylü küf enfeksiyonu. İçinde: Proceedings of the 1988 Sunflower Research Workshop, Bismarck, USA: National Sunflower Association, 9.
  • Masirevic S, 1992. Bölgemizde ve dünyada ayçiçeğinde bulunan tüylü mildiyö (Plasmopara halstedii) ırkları. Zbornik Radova, 20:405-408.
  • Mayee CD, Patil MA, 1987. Hindistan'da ayçiçeğinin tüylü küfü. Tropical Pest Management, 33(1):81-82
  • Melero-Vara JM, Garcia-Baudin C, Lopez-Herrera CJ, Jimenez-Diaz RM, 1982. Ayçiçeği mildiyösünün metalaxyl ile kontrolü. Bitki Hastalıkları, 66(2):132-135
  • Melero-Vara JM, Molinero Luiz L, Merino A, Dominguez J, 1996. Razas de Plasmopara halstedii presentes en Espana y evaluacion de susceptibilidad en hibridos comerciales. İçinde: ISA Sempozyumu Bildirileri I, Ayçiçeğinde Hastalık Toleransı, Pekin, Çin: Uluslararası Ayçiçeği Derneği, 7-13.
  • Meliala C, Vear F, Labrouhe DTde, 2000. Ayçiçeği mildiyösünün (Plasmopara halstedii) enfeksiyon tarihi ile semptomların gelişimi arasındaki ilişki. Helia, 23(32):35-44.
  • Molinero-Ruiz ML, Domfnguez J, Melero-Vara JM, 2002. İspanya'dan Plasmopara halstedii izolatlarının ırkları ve virulansları üzerine çalışmalar. Plant Disease, 86(7):736-740; 28 ref.
  • Moses GJ, 1989. Andhra Pradesh'de ayçiçeğinde yeni bir tüylü mildiyö oluşumu. APAU Araştırma Dergisi, 17(1):73
  • Nandeeshkumar P, Ramachandra K, Prakash HS, Niranjana SR, Shetty H, 2008. Ayçiçeğinde küllemeye karşı rizobakteriler tarafından direnç indüksiyonu, 3(4):255-262.
  • Nandeeshkumar P, Sarosh BR, Kini KR, Prakash HS, Shetty HS, 2009. Tüylü mildiyö patojeni Plasmopara halstedii'ye karşı ayçiçeğinde beta-amino bütirik asit ile direnç ve savunma ile ilgili proteinlerin ortaya çıkarılması. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 42(11):1020-1032.
  • Nandeeshkumar P, Sudisha J, Ramachandra KK, Prakash HS, Niranjana SR, Shekar SH, 2008. Plasmopara halstedii'nin neden olduğu ayçiçeğindeki tüylü küfe karşı kitosan kaynaklı direnç. PMPP Fizyolojik ve Moleküler Bitki Patolojisi, 72(4/6):188-194.
  • Nikolov G, 1981. Apron 35 SD, ayçiçeğinin tüylü küf hastalığının kontrolünde etkili bir preparat. Rastitelna Zashchita, 29(3):40-41
  • Nishimura M, 1922. Plasmopara halstedii üzerine çalışmalar. J. Coll. Agric, 3(XI):185-210.
  • Novotel'nova NS, 1966. Ayçiçeğinin tüylü küfü. Moskova, SSCB: Nauka.
  • Onan E, Onogur E, 1989. Ayçiçeğinde mildiyö (Plasmopara helianthi Novot.). Ege Üniversitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, 26(1):271-286
  • Onan E, Onogur E, 1991. Ayçiçeği mildiyösünün (Plasmopara helianthi Novot.) konukçu ve patojen ilişkisi üzerinde araştırmalar. Türk Fitopatoloji Dergisi, 20(1):1-10
  • Oros G, Viranyi F, 1987. Ayçiçeği mildiyösünün (Plasmopara halstedii) kontrolü için fungisitlerin serada değerlendirilmesi. Annals of Applied Biology, 110(1):53-63
  • Patil MA, Mayee CD, 1988. Hindistan'da ayçiçeğinde tüylü mildiyö araştırmaları. İçinde: Proceedings of the 12th International Sunflower Conference, Novi Sad, Yugoslavya: 2:42.
  • Patil MA, Phad HB, Ramtirthkar MS, 1993. Maharashtra'da yeni ortaya çıkan ayçiçeği mildiyösünün oluşumu ve dağılımı. Maharashtra Tarım Üniversiteleri Dergisi, 18(1):129-130
  • Rahmani Y, Madjidieh-Ghassemi S, 1975. Serada ve deneysel tarla testinde farklı ayçiçeği çeşitlerinin ve inbred hatlarının tüylü mildiyö Plasmopara helianthi Novt.'ye karşı göreceli direnci üzerine araştırma, 1973. Iranian Journal of Plant Pathology, 11(3/4):96-104; 42-45
  • Rashid KY, 1991. Manitoba'da ayçiçeği tüylü küfü. İçinde: Proceedings of the Sunflower Research Workshop, Fargo, USA: National Sunflower Association, 12.
  • Rashid KY, 1993. 1988-1991 yılları arasında Batı Kanada'da ayçiçeğinde Plasmopara halstedii'nin görülme sıklığı ve virulansı. Canadian Journal of Plant Pathology, 15(3):206-210
  • Rivera Y, Rane K, Crouch JA, 2014. Maryland'de kara gözlü Susan (Rudbeckia fulgida cv. 'Goldsturm') üzerinde Plasmopara halstedii'nin neden olduğu tüylü mildiyö hastalığının ilk raporu. Plant Disease, 98(7):1005-1006.
  • Roeckel-Drevet P, Coelho V, Tourvieille J, Nicolas P, Labrouhe DTde, 1997. Ayçiçeği Helianthus annuus'ta tüylü mildiyö hastalığına neden olan Plasmopara halstedii'nin Fransa'da tanımlanmış ırklarında genetik değişkenlik eksikliği. Canadian Journal of Microbiology, 43(3):260-263; 23 ref.
  • Roeckel-Drevet P, Tourvieille J, Drevet JR, Says-Lesage V, Nicolas P, Labrouhe DTde, 1999. Ayçiçeğinde biyotrofik patojen Plasmopara halstedii'nin tespiti için bir polimeraz zincir reaksiyonu tanı testinin geliştirilmesi. Canadian Journal of Microbiology, 45(9):797-803; 27 ref.
  • Rozynek B, Spring O, 2000. Almanya'nın güney bölgelerinde ayçiçeği mildiyösü patotipleri. Helia, 23(32):27-34; 18 ref.
  • Rozynek B, Spring O, 2001. Yaprak disk inokülasyonu, ayçiçeği mildiyösünde metalaxyl toleransının taranması için hızlı ve hassas bir test. Journal of Phytopathology, 149(6):309-312; 17 ref.
  • Ruiz MLM, Dominguez J, Vara JMM, Gulya TJ, 2000. Plasmopara halstedii'nin İspanyol izolatlarında metalaxyl'e tolerans. İçinde: Proc. 15th Int. Ayçiçeği Konferansı Toulouse, Fransa: ISA, (G):11-15.
  • Sackston WE, 1981. Ayçiçeğinin tüylü küfü. İçinde: Spencer DE, ed. The Downy Mildews. Londra, İngiltere: Academic Press, 545-575.
  • Sackston WE, 1992. Koşu bandında: ayçiçeklerinin hastalıklara karşı direnç için ıslahı. Annual Review of Phytopathology, 30:529-551; 123 ref.
  • Sackston WE, Anas O, Paulitz T, 1992. Ayçiçeğinde tüylü mildiyö ile biyolojik mücadele. İçinde: Amerikan Fitopatoloji Derneği Kuzey-Doğu Bölümü Toplantısı Özetleri, Portland, ABD: 33.
  • Sakr N, Ducher M, Tourvieille J, Walser P, Vear F, Labrouhe DTde, 2009. Plasmopara halstedii'nin (ayçiçeği mildiyösü) saldırganlığını ölçmek için bir yöntem. Journal of Phytopathology, 157(2):133-136.
  • Says-Lesage V, Meliala C, Nicolas P, Roeckel-Drevet P, Tourvieille de Labrouhe D, Archambault D, Billaud F, 2001. Ayçiçeği tohumlarında küf (Plasmopara halstedii) varlığını göstermek için moleküler test. OCL - Ole^acute~agineux, Corps Gras, Lipides, 8(3):258-260; 5 ref.
  • Schuck E, Jobim CIP, 1988. Rio Grande do Sul, Viamao ve Santo Augusto'da ayçiçeği (Helianthus annuus L.) hastalıkları. Agronomia Sulriograndense, 24(2):221-232; 12 ref.
  • Simay EI, 1993. Budapeşte'nin Budateteny ve Cinkota bölgelerinde gözlenen nadir mikrofungusların insidansı. Mikologiai Kozlemenyek, 32(1-2):81-89
  • Skoric D, 1994. Baskın hastalıklara direnç için ayçiçeği ıslahı. İçinde: Proceedings of the EUCARPIA Oil and Protein Crops Section, Yağ ve Protein Bitkileri Islahı Sempozyumu, Albena, Bulgaristan, 30-48.
  • Bahar O, 2000. Ayçiçeğinin tüylü mildiyösü Plasmopara halstedii'de homotallik eşeyli üreme. Helia, 23(32):19-26; 13 ref.
  • Spring O, 2001. Ayçiçeğinin Plasmopara halstedii ile sistemik olmayan enfeksiyonları ve bunların patojenin dağılımındaki varsayılan rolü. Bitki Hastalıkları ve Koruma Dergisi, 108:329-336.
  • Spring O, Benz A, Faust V, 1991. Tüylü küf (Plasmopara halstedii) enfeksiyonunun ayçiçeğinin gelişimi ve metabolizması üzerindeki etkisi. Zeitschrift fur Pflanzenkrankheiten und Pflanzenschutz, 98(6):597-604
  • Spring O, Haas K, 2002. Plasmopara halstedii'nin yağ asidi bileşimi ve taksonomik önemi. European Journal of Plant Pathology, 108(3):263-267; 20 ref.
  • Spring O, Miltner F, Gulya TJ, 1994. Almanya'da ayçiçeği mildiyösünün (Plasmopara halstedii) yeni ırkları. Journal of Phytopathology, 142(3-4):241-244
  • Spring O, Rozynek B, Zipper R, 1998. Ayçiçeği mildiyösü ile tek sporlu enfeksiyonlar. Journal of Phytopathology, 146(11/12):577-579; 7 ref.
  • Spring O, Zipper R, 2000. Ayçiçeği mildiyösü Plasmopara halstedii'nin oosporlarının izolasyonu ve oospor çimlenmesi üzerine mikroskobik çalışmalar. Journal of Phytopathology, 148(4):227-231; 15 ref.
  • Spring O, Zipper R, 2006. Ayçiçeği mildiyösü Plasmopara halstedii'de eşeysiz genetik rekombinasyon kanıtı. Mycological Research, 110(6):657-663.
  • Sudisha J, Niranjana SR, Sukanya SL, Girijamba R, Devi NL, Shetty HS, 2010. Ayçiçeğinde külleme hastalığının kontrolünde strobilurin formülasyonlarının göreceli etkinliği. Journal of Pest Science, 83(4):461-470.
  • Thanassoulopoulos CC, Mappas CB, 1992. Yunanistan'da ayçiçeğinde tüylü mildiyö hastalığının ilk raporu. Bitki Hastalıkları, 76(5):539
  • Tourvieille J, Roeckel-Drevet P, Nicolas P, Tourvieille de Labrouhe D, 1996. Ayçiçeği mildiyösü (Plasmopara halstedii) ırklarının RAPD ile karakterizasyonu. İçinde: Proceedings of the 14th International Sunflower Conference, Beijing, 781-785.
  • Vida R, 1966. Ayçiçeğinin tüylü küfü: önemli bir geri dönüş. Növényvédelem, 32:533-535.
  • Virányi F, 1984. Macaristan'da ayçiçeğinin tüylü mildiyösü üzerine son araştırmalar. Helia, 7:35-38.
  • Virányi F, 1988. Plasmopara halstedii'de oospor oluşumunu etkileyen faktörler. İçinde: Proceedings of the 12th International Sunflower Conference, Novi Sad, Yugoslavia, Vol, 2:32.
  • Viranyi F, Gulya TJ, 1995. Macaristan'dan Plasmopara halstedii'de (ayçiçeği mildiyösü) virülans için izolatlar arası varyasyon. Bitki Patolojisi, 44(4):619-624
  • Virányi F, Gulya TJ, 1995a. Plasmopara halstedii'de patojenik varyasyon. İçinde: Downy Mildew Fungi 1. Uluslararası Sempozyumu bildiri özetleri, Gwatt, İsviçre: Avrupa Mikrobiyoloji Dernekleri Federasyonu, Ciba-Geigy.
  • Virányi F, Gulya TJ, 1996. Plasmopara halstedii - ayçiçeği patosisteminde direnç ifadesi. İçinde: ISA Sempozyumu Bildirileri I, Ayçiçeğinde Hastalık Toleransı, Pekin, Çin: Uluslararası Ayçiçeği Derneği, 14-21.
  • Viranyi F, Sziraki I, 1986. Plasmopara halstedii ve ayçiçeğinin ikili kültürlerinin oluşturulması. İngiliz Mikoloji Derneği İşlemleri, 87(2):323-325
  • Viranyi F, Walcz I, 2000. Plasmopara halstedii üzerine popülasyon çalışmaları: konukçu özgüllüğü ve fungusit toleransı. İçinde: Proceedings of the 15th International Sunflower Conference Toulouse, France: ISA, (I):55-60.
  • Walcz I, Bogßr K, Virßnyi F, 2000. Plasmopara halstedii'nin bir Ambrosia izolatı üzerine çalışma. Helia, 23(33):19-24; 8 ref.
  • Yang SM, Wei SE, 1988. Çin Halk Cumhuriyeti, Liaoning Eyaleti'nde ekili ayçiçeği hastalıkları. Bitki Hastalıkları, 72(6):546
  • Yorinori FT, Henning AA, Ferreira LP, Homechin M, 1985. Brezilya'da ayçiçeği hastalıkları. İçinde: Proceedings of the 11th International Sunflower Conference, Mar del Plata, Brazil, 459.
  • Zad J, 1978. Ayçiçeği mildiyösünün tohumla taşınması. Iranian Journal of Plant Pathology, 14(1/4):1-2; 1-7
  • Zazzerini A, 1978. Eğimle ilişkili olarak Plasmopara helianthi Novot'un yayılması. Phytopathologia Mediterranea, 17(3):153-156
  • Zazzerini A, 1983. Ayçiçeğinde Peronospora hastalığı (Plasmopara helianthi Novot.): parazitin fizyolojik ırkları ve enfekte materyali tanımlama yöntemleri. Informatore Fitopatologico, 33(2):117-119
  • Zimmer DE, 1974. Amerika ve Avrupa'da Plasmopara halstedii ırkları arasında fizyolojik uzmanlaşma. Phytopathology, 64(11):1465-1467

Sclerotinia çürüklüğü

Sklerotinin karpojenik çimlenmesi, sürekli toprak nemi dönemleri ile uyarılır. Toprak yüzeyinde askosporların havaya salındığı apothecia oluşur. Çoğu bitki türünün enfeksiyonu esas olarak askosporlarla ilişkilidir, ancak çimlenen askosporlardan sağlıklı, sağlam bitki dokusunun doğrudan enfeksiyonu genellikle meydana gelmez. Bunun yerine, sağlıklı bitkilerin yaprak ve gövde dokusunun enfeksiyonu, yalnızca çimlenen askosporların enfeksiyon yapılarının oluşmasından ve penetrasyondan önce ölü veya yaşlanan dokularda, genellikle apseli taç yapraklar gibi çiçek kısımlarında kolonize olmasıyla sonuçlanır. Sklerotinin toprak yüzeyinde miselyojenik çimlenmesi de ölü organik maddelerin kolonizasyonu ve ardından bitişikteki canlı bitkilerin enfeksiyonu ile sonuçlanabilir. Bununla birlikte, bazı ürünlerde, örneğin ayçiçeğinde, sklerotinin miselyojenik çimlenmesi doğrudan köklerde ve bazal gövdede solgunlukla sonuçlanan enfeksiyon sürecini başlatabilir. Ayçiçeğinde miselyojenik çimlenme ve enfeksiyon için uyarıcı bilinmemektedir, ancak muhtemelen konukçu bitkilerden türetilen rizosferdeki beslenme sinyallerine bağlıdır.

Enfeksiyon süreci

Sağlıklı dokunun enfeksiyonu, konukçu yüzeyine bağlı olarak basit veya karmaşık yapıda olabilen bir appressorium oluşumuna bağlıdır. Çoğu durumda, penetrasyon stomalardan değil doğrudan kütiküladan gerçekleşir. Appressoria, konukçu yüzeyinde büyüyen hiflerin terminal dikotom dallanmalarından gelişir ve müsilaj ile tutturuldukları konukçu yüzeyine dik olarak yönlendirilmiş geniş, çok septalı, kısa hiflerden oluşan bir pedden oluşur. Kompleks apressoriler genellikle enfeksiyon yastıkları olarak adlandırılır. Daha önceki araştırmacılar kütikülün penetrasyonunun tamamen mekanik bir süreç olduğunu düşünmüş olsa da, ultra-yapısal çalışmalardan elde edilen güçlü kanıtlar kütikülün enzimatik sindiriminin de penetrasyon sürecinde rol oynadığını göstermektedir. Hakkında çok az şey bilinmektedir S. sclerotiorum Bununla birlikte, genom en az dört kütinaz benzeri enzim kodlar (Hegedus yayınlanmamıştır). Penetrasyondan önce appressorium ucunda oluşan büyük bir vezikül, penetrasyon sırasında konak kütikülüne salınıyor gibi görünmektedir. Kütikülün penetrasyonundan sonra, büyük hiflerin epidermisin subkütiküler duvarını aşarak ve eriterek yayıldığı subkütiküler bir vezikül oluşur.

Salgın hücrelerinin enzimatik bozunması yoluyla enfeksiyon: Oksalik asit, poligalakturonaz (PG) gibi hücre duvarını parçalayan enzimlerle birlikte çalışarak orta lameldeki pektine PG saldırısı için elverişli bir ortam yaratarak konak dokunun tahrip olmasını sağlar. Bu da, ek PG genlerinin ifadesini indükleyen düşük moleküler ağırlıklı türevleri serbest bırakır. Aslında, genel PG aktivitesi pektin veya galakturonik asit gibi pektinden türetilmiş monosakkaritler tarafından indüklenir ve glukoz varlığında baskılanır. Bireysel Sspg genlerinin ifade kalıplarının incelenmesi, enfeksiyonun çeşitli aşamaları sırasında PG'ler arasında ve konakçı ile etkileşimin ince bir şekilde koordine edildiğini ortaya koymuştur. (Dwayne D. Hegedus *, S. Roger Rimmer: Sclerotinia sclerotiorum: Ne zaman bir patojen "olmak ya da olmamak" gerekir? FEMS Mikrobiyoloji Mektupları 251 (2005) 177-184)

Enfeksiyon için İklim Koşulları Arayışı S. sclerotiorum apothecia oluşumu, sporülasyon, apothecia tarafından doğrudan enfeksiyon (çok sık gerçekleşmese bile) ve epidemik hücrelerin enkimatik bozunması yoluyla yerleşik misellerden enfeksiyon dikkate alınmalıdır. Apothecia oluşumu ve sporulasyon 8 mm'den fazla bir yağmuru, 21°C ila 26°C optimum sıcaklıkta 20 saatten uzun süren yüksek bağıl nem periyodu takip ederse gerçekleşir.
Apothecia ile Doğrudan Enfeksiyon optimum 21°C ila 26°C ("appressoria enfeksiyonu") altında 90%'den daha yüksek 16 saatlik bağıl nemi takip eden bir yaprak ıslaklık döneminden sonra beklenebilir. Oysa Saprofitik büyümeyi takiben epidermik hücrelerin enzimatik degratasyonu ("hidrolitik enfeksiyon"), 21°C ila 26°C'lik optimum koşullar altında 24 saat boyunca süren 80%'nin biraz daha düşük bağıl nemliliği altında beklenebilir.

Edebiyat:

  • Lumsden, R.D. (1976) Sclerotinia sclerotiorum'un pektolitik enzimleri ve bunların enfekte fasulye üzerindeki lokalizasyonu. Can. J. Bot. 54,2630-2641.
  • Tariq, V.N. ve Jeffries, P. (1984) Sclerotinia sclerotiorum tarafından appressorium oluşumu: taramalı elektron mikroskopisi. Trans. Brit. Mycol. Soc. 82, 645-651.
  • Boyle, C. (1921) Parazitlik fizyolojisi üzerine çalışmalar. VI. Sclerotinia libertiana tarafından enfeksiyon. Ann. Bot. 35, 337-347.
  • Abawi, G.S., Polach, F.J. ve Molin, W.T. (1975) Fasulyenin Whetzelinia sclerotiorum askosporları ile enfeksiyonu. Phytopathology 65, 673-678.
  • Tariq, V.N. ve Jeffries, P. (1986) Sclerotinia sclerotiorum tarafından Phaseolus spp. penetrasyonunun ultrastrüktürü. Can. J. Bot. 64, 2909- 2915.
  • Marciano, P., Di Lenna, P. ve Magro, P. (1983) Patogenezde oksalik asit, hücre duvarı parçalayıcı enzimler ve pH ve bunların ayçiçeğindeki iki Sclerotinia sclerotiorum izolatının virülensindeki önemi. Physiol. Plant Pathol. 22, 339-345.
  • Fraissinet-Tachet, L. ve Fevre, M. (1996) Sclerotinia sclerotiorum tarafından ppektinolitik enzim üretiminin galakturonik asit ile düzenlenmesi. Curr. Microbiol. 33, 49-53.

Sclerotinia Modelinin Pratik Kullanımı

Beyaz Bacak Enfeksiyon Modeli, apothecia oluşumunun beklendiği dönemleri göstermektedir. Bu dönemler kolza tohumu veya kanolanın çiçeklenme dönemine denk geliyorsa, şunları beklememiz gerekir S. sclerotiorum nemli bir dönem boyunca enfeksiyonlar. Apothecia'da oluşan sporlar bir ila birkaç gün boyunca mevcut olabilir. Enfeksiyon fırsatı, appressoria veya enkimatik hücre duvarı degratasyonu yoluyla doğrudan veya dolaylı enfeksiyonlar için enfeksiyon ilerlemesinin hesaplanmasıyla gösterilir. Enfeksiyon ilerleme çizgisi 100%'ye ulaşırsa bir enfeksiyon olduğu varsayılmalıdır. Bu enfeksiyonlara karşı önleyici veya iyileştirici etkiye sahip bir fungisit kullanılmalıdır. S. sclerotiorum kullanılmalıdır.

Gri küf

Gri Kalıp (Botrytis cinerea) üretimde yüksek ekonomik etkiye sahip yıkıcı bir hastalıktır. B. cinerea çiçekleri ve olgunlaşmaya yakın meyveleri enfekte eder.
Fungal patojen, 200'den fazla farklı konağı enfekte ederek çok geniş bir konak aralığına sahiptir. Fungal büyüme saprofitik ve parazitik olarak mevcuttur.

Semptomlar

Ayçiçeklerinde patojen, baş ve gövdede gri bir küfe neden olur. Bu sırada yapraklar kurumaya başlar. Bu belirtiler baştaki tanelerin olgunlaşması sırasında ortaya çıkar. Arka tarafta kahverengi lekeler görülür. Bu lekeler fungal miselyum ve sporlar tarafından kaplanır ve tozlu bir görünüm verir. Sporlar yağışlı hava koşullarında yayılabilir.

Medulladan yoksun siyah sklerotia, hasattan sonra ürün döküntülerinde veya çok geç hasat edilirse doğrudan bitkilerde görülür.

Mantar kış boyunca toprak yüzeyinde veya toprakta miselyum veya sklerotia olarak kışı geçirir. İlkbaharda, kışlayan form çimlenmeye ve konidya üretmeye başlar. Bu konidiler rüzgar ve yağmurla yayılır ve yeni bitki dokusunu enfekte eder.

85% üzerindeki bağıl nemde çimlenme mümkündür. En uygun çimlenme sıcaklığı 18°C'dir. Fungal patojen birden fazla kez üreyebilir.

Kontrol seçenekleri: Tohum kontrolü bitkileri nemlenmeden koruyabilir. Patojenin direnci nedeniyle kimyasal kontrol zordur. Bu nedenle Trichoderma harzianum ile doğal kontrol stratejileri için girişimlerde bulunulmaktadır.

Enfeksiyon modelleme koşulları

B. cinerea enfeksiyonları serbest nem ile ilişkilidir. Bu nedenle açık alan üretiminde iyi bir gösterge olan yaprak ıslaklığı belirlenir.
Bulger ve arkadaşları (1987) çiçeklenme sırasındaki yaprak ıslaklık süreleri ile meyvelerde gri küf oluşumu arasındaki ilişkiyi incelemişlerdir. 20°C'de daha yüksek bir enfeksiyon riski için 32 saatten daha uzun bir yaprak ıslaklığı süresine ihtiyaç olduğunu bulmuşlardır. Daha düşük sıcaklıklarda, hastalığın bulaşması için yaprak ıslaklık sürelerinin daha uzun olması gerekir.

FieldClimate, yaprak ıslaklık dönemleri ve bu dönemlerdeki sıcaklık bazında Botrytis cinerea riskini gösterir.

Aşağıdaki grafik, ıslak yaprakların süresini, bir yaprak için gereken gerçek sıcaklığa bağlı olarak göstermektedir Botrytis Enfeksiyon. Risk 0'dan yüksekse, 4 saatten uzun her yaprak ıslaklık süresi riski aynı oranda artıracaktır.
Yaprak ıslaklık süresi 4 saatten kısa olan bir günün kuru bir gün olduğu varsayılır ve riski gerçek değerin 20%'si kadar azaltır.

Gri Kalıp Modelinin pratik kullanımı: Model, riskli dönemleri göstermektedir Botrytis Enfeksiyon. Çileğin çiçek açması sırasındaki bu risk dönemi enfekte meyvelere yol açacaktır. Risk dönemi ne kadar uzun sürerse ve risk ne kadar yüksek olursa, enfekte meyve olasılığı ve sayısı da o kadar yüksek olur. Dikkate alınabilecek risk, pazara bağlıdır. Meyvelerini süpermarketlere satan yetiştiriciler, enfekte meyveleri satamayacaklarını bildiklerinden herhangi bir risk almayacaklardır. Meyvelerini doğrudan halka satan yetiştiriciler ise daha yüksek bir risk alabilmektedir.

Edebiyat:

  • Bulger M.A., Ellis M. A., Madden L. V. (1987): Çilek çiçeklerinin Botrytis cinerea tarafından enfeksiyonu ve enfekte çiçeklerden kaynaklanan meyvelerin hastalık insidansı üzerine sıcaklık ve ıslaklık drüasyonu etkisi. Ecology and Epidemiology; Vol 77 (8): 1225-1230.
  • Sosa-Alvarez M., Madden L.V., Ellis M.A. (1995): Sıcaklık ve ıslaklık süresinin Botrytis cinerea'nın çilek yaprak kalıntıları üzerindeki sporulasyonu üzerine etkileri. Bitki hastalıkları 79, 609-615.

TomCast

TOMCAST (TOMato disease foreCASTing), domateslerde Erken Yanıklık, Septoria Yaprak Lekesi ve Antraknoz gibi mantar hastalıklarının gelişimini tahmin etmeye çalışan, tarla verilerine dayalı bir bilgisayar modelidir. Sahaya yerleştirilen veri kaydediciler saatlik yaprak ıslaklığı ve sıcaklık verilerini kaydetmektedir. Bu veriler 24 saatlik bir süre boyunca analiz edilmekte ve sonuç olarak Hastalık Şiddet Değeri (DSV)esasen hastalık gelişiminin bir artışıdır. DSV biriktikçe, ürün üzerinde hastalık baskısı oluşmaya devam eder. Biriken DSV sayısı püskürtme aralığını aştığında, hastalık baskısını hafifletmek için bir fungisit uygulaması önerilir.

TOMCAST, Pennsylvania Eyalet Üniversitesi'nde (PSU) Dr. Madden, Pennypacker ve MacNab? tarafından geliştirilen orijinal F.A.S.T. (Forecasting Alternaria solani on Tomatoes) modelinden türetilmiştir. PSU F.A.S.T. modeli, Ontario'daki Ridgetown College'da Dr. Pitblado tarafından Ohio State University Extension tarafından kullanılan TOMCAST modeline dönüştürülmüştür. DSV şunlardır: Hastalık Şiddet Değeri (DSV), hastalık (erken yanıklık) gelişiminin belirli bir artışına verilen ölçü birimidir. Başka bir deyişle DSV, bir domates tarlasında hastalığın (erken yanıklık) ne kadar hızlı veya yavaş biriktiğinin sayısal bir göstergesidir. DSV iki faktör tarafından belirlenir; yaprak ıslaklığı ve "yaprak ıslak" saatlerindeki sıcaklık. Yaprak ıslak saatlerinin sayısı ve sıcaklık arttıkça, DSV daha hızlı bir şekilde birikir. Aşağıdaki Hastalık Şiddet Değeri Tablosuna bakın.

Tersine, daha az yaprak ıslak saati olduğunda ve sıcaklık daha düşük olduğunda, DSV hiç değilse yavaş birikir. Biriken toplam DSV sayısı, sprey aralığı veya eşik olarak adlandırılan mevcut bir sınırı aştığında, yaprakları ve meyveyi hastalık gelişiminden korumak için bir fungisit spreyi önerilir.

Püskürtme aralığı (ne zaman püskürtmeniz gerektiğini belirleyen) 15-20 DSV arasında değişebilir. Bir yetiştiricinin kullanması gereken tam DSV genellikle işleyici tarafından sağlanır ve meyve kalitesine ve domateslerin son kullanımına bağlıdır. 15 DSV püskürtme aralığını takip etmek, TOMCAST sisteminin muhafazakar bir kullanımıdır, yani TOMCAST sistemi ile 19 DSV püskürtme aralığı kullanan bir yetiştiriciden daha sık püskürtme yapacaksınız. Bunun karşılığı, sezon boyunca uygulanan sprey sayısı ve meyve kalitesindeki potansiyel farklılıktır.

Michigan Staate Üniversitesi'nde havuçtaki yaprak yanıklıklarının yönetiminde kullanılmak üzere TomCast adlı hastalık tahmin sistemini test etmek için çalışmalar başlatılmıştır. TomCast ticari olarak domates üretiminde kullanılmış ve yakın zamanda kuşkonmaz hastalık yönetiminde kullanılmak üzere adapte edilmiştir. İşleme havuçları 'Early Gold', MSU Muck Soils Araştırma Çiftliği'nde hassas bir vakumlu ekim makinesi ile 50 fit uzunluğunda yükseltilmiş bir yatakta 18 inç aralıklarla üç sıra halinde ekildi. Havuç yatakları 64 inçlik merkezlere yerleştirilmiş ve sıra içi tohum aralığı 1 inç olmuştur. Deneyin dört tekrarının her biri 36 yataktan oluşan ayrı havuç bloklarında yer almıştır. Her replikasyonda 20 feet uzunluğunda on yedi uygulama yatağı rastgele bir dama tahtası düzeninde yerleştirilmiştir. Uygulamalar, 8002 düz fan nozulları kullanılarak dönüm başına 50 galon püskürtme solüsyonu verecek şekilde kalibre edilmiş bir CO2 sırt çantalı püskürtücü ile uygulanmıştır. Uygulamalar, Quadris 2.08SC (6.2 fl oz/A) ile dönüşümlü olarak Bravo Ultrex 82.5WDG'nin (22.4 oz/A) işlenmemiş ve farklı program uygulamalarından oluşmuştur. Kimyasal program, 10 günlük bir takvim programının yanı sıra TomCast hastalık tahmincisi tarafından tahmin edildiğinde uygulanmıştır. Fungisit uygulamalarını zamanlamak için 15, 20 ve 25 DSV'lik üç farklı tahmin eşiği kullanılmıştır. Kümülatif günlük DSV değerleri belirlenen eşiğe ulaştığında bir sprey uygulanacaktı. Her bir uygulama rejimi dört farklı hastalık baskısı seviyesinde başlatılmıştır (0%, iz, 5% ve 10% yaprak yanıklığı). İlk uygulamalar 2 Temmuz'da ve herhangi bir uygulamanın son uygulaması 21 Eylül'de yapılmıştır. Püskürtme bloklarının her bir orta sırasının on ayağı ilk uygulamadan önce işaretlenmiş ve haftalık hastalık derecelendirmeleri için kullanılmıştır (aşağıdaki grafiklere bakınız). Verimler, havuçlar elle hasat edilerek ve tepeleri alınıp tartılarak sıranın aynı on fitlik bölümünden alınmıştır.

Bu, havuçta ilk tedavinin tarlada ilk hastalık insidansını bulur bulmaz yapılması gerektiğini göstermektedir. Şu andan itibaren, son ilaçlamadan bu yana biriken 20 DSV eşiği ile TomCast modelinin kullanılmasıyla iyi çalıştı.

Tarla iklimi, Alternaria Enfeksiyonunun şiddetini iki farklı modelde belirler:

Kaynak: Jim Jasinski, OHIO, INDIANA ve MICHIGAN TOMCAST Koordinatörü

TomCast Alternaria Modeli

Yaprak ıslaklık saatleri ve hava sıcaklığı gibi iklim koşullarına bağlı olarak, bir Enfeksiyonun şiddet değerleri (0 - 4 arası, yukarıdaki tabloya bakınız) belirlenir.

Önerilen ekipman

Bu ürünün potansiyel hastalıklarını izlemek için hangi sensör setinin gerekli olduğunu kontrol edin.

ELEKTRONIK TABLOYU INDIR