Modele de boli - floarea-soarelui

Floarea-soarelui modele de boli

Miliardul pufos

Ciuperca care cauzează apariția otrăvii la floarea-soarelui este cunoscută sub numele de Plasmopara halstedii sau Plasmopara helianthi. Complexul de ciuperci patogene infectează o gamă largă de genuri din familia Asteraceae, inclusiv specii sălbatice și cultivate de Helianthus. Boala este prezentă oriunde se cultivă floarea-soarelui.

Ciclul de viață

Pornind de la un singur oospor care germinează și dă naștere unui zoosporangiu, diferențierea și eliberarea zoosporului reprezintă etapele ulterioare ale dezvoltării. În prezența apei libere, zoosporii se deplasează rapid către locurile de infecție (rădăcină, hipocotil), dacă sunt disponibile. În urma encistării și a alungirea tubului germinativ (acesta din urmă se termină, de obicei, printr-un apriorium împotriva unei celule gazdă), ciuperca dezvoltă o structură de infecție (pivotul de infecție) pentru penetrarea directă. În condiții experimentale, s-a demonstrat că, de obicei, tuburile germinative nu formează appressorii în apă, dar o fac în prezența celulelor gazdă (Gray et al., 1985). După penetrare, ciuperca se dezvoltă intracelular și apoi intercelular, iar odată stabilită într-o gazdă sensibilă (compatibilă) începe să colonizeze întreaga plantă pe cale sistemică, crescând de preferință spre vârful lăstarilor și, într-o măsură mai mică, în direcția rădăcinii. Când condițiile sunt favorabile, sporularea asexuată are loc pe frunzele afectate și, ocazional, pe țesuturile subterane. Sporangii complet dezvoltați se răspândesc prin vânt și, deoarece au o durată de viață scurtă și sunt sensibili la secetă și la expunerea directă la soare, supraviețuirea lor depinde de situația meteorologică actuală. Oosporii sunt, de asemenea, produși în părțile infectate ale plantei, în principal în țesuturile rădăcinilor și ale tulpinii inferioare, în timp ce frunzele și părțile superioare ale plantei, cu excepția semințelor, sunt lipsite de acești spori în repaus (Sackston, 1981; Virányi, 1988; Onan și Onogur, 1991). Stadiul cel mai susceptibil al dezvoltării gazdei este între germinare și răsărire (Meliala et al. 2000).

Supraviețuirea și sursa de inoculum

În ceea ce privește infecția primară, P. halstedii este un agent patogen transmis prin sol. Oosporii săi servesc ca inocul primar pentru țesuturile subterane ale răsadurilor tinere de floarea-soarelui. Poate fi, de asemenea, transmis de vânt, provocând infecții secundare ale frunzelor și/sau inflorescențelor. În acest din urmă caz, ciuperca poate fi, de asemenea, transmisă prin semințe: semințele afectate transportă miceliul și/sau oosporii în interior. Oosporii se dezvoltă în principal în țesuturile rădăcinilor și ale tulpinilor inferioare ale plantelor mucegăite, cu sau fără simptome vizibile și, odată cu reziduurile vegetale ale culturii precedente de floarea-soarelui, ajung în sol. Oosporii au o viață lungă și pot supraviețui timp de cel puțin 6-8 ani (Sackston, 1981; Virányi, 1988). În general, se consideră că oosporii germinează în principal în condiții de umiditate. Cu toate acestea, până în prezent sunt disponibile doar câteva rezultate privind dinamica germinației. S-a demonstrat că un șoc de temperatură scăzută înainte de umezeală și prezența exsudatelor gazdei eliberate de rădăcini îmbunătățesc procesul de germinare (Delanoe, 1972). Într-un alt raport (Spring & Zipper 2000), nu s-au putut observa astfel de efecte ale temperaturii și s-a raportat că oosporii proaspăt dezvoltați germinează spontan în apă într-o perioadă de 10-30 de zile, dar la o rată foarte variabilă (1-17%).

Cu toate acestea, infecția secundară este considerată ca fiind un factor important în răspândirea bolii în anumite regiuni în condiții de mediu favorabile. În afară de faptul că infecția secundară a inflorescenței poate da naștere unei infecții latente a semințelor de către P. halstedii (Sackston, 1981), de la leziunile locale ale frunzelor, ciuperca poate să se dezvolte și să ajungă în tulpină, provocând o infecție sistemică (Spring 2001).

Epidemiologie

Natura inoculului (oosporă sau zoosporă), variabilele meteorologice (umiditate relativă, temperatură), locul de infecție (vârsta țesutului), precum și reacția soiului sunt factori care influențează sau determină procesul de infecție, incidența și severitatea bolii. Zoosporii, care provin fie din sporularea sexuată, fie din cea asexuată, au nevoie de apă liberă pentru a-și păstra viabilitatea și capacitatea de a se deplasa spre focarele de infecție. În consecință, ploile sau irigarea intensivă reprezintă o condiție prealabilă pentru inițierea infecției. Mai multe studii au arătat că, în cazul în care ploile sau aprovizionarea cu apă corespunzătoare au fost suficiente în primele două săptămâni de la semănat, incidența infecției primare din sol a crescut. Cu toate acestea, durata de timp care favorizează infecția este relativ scurtă și chiar și floarea-soarelui sensibilă devine rezistentă odată cu vârsta (Sackston, 1981). Tourvieille et al. (2008a) au constatat că riscul de atac de mildiu pare să fie mai mare dacă ploile abundente au avut loc atunci când răsadurile de floarea-soarelui se aflau în stadiul cel mai sensibil, în timp ce ploile abundente înainte de semănat sau după răsărire nu au avut niciun efect asupra procentului de plante bolnave. Göre (2009) că temperaturile scăzute și ploile extinse de primăvară în aproximativ 85% pierderi de randament și o calitate mai scăzută a producției de floarea-soarelui în regiunea Marmara din Trace. Pe lângă condițiile de mediu, intensitatea bolii poate fi influențată și de agresivitatea populației de agenți patogeni. Sakr et al. (2009) au reușit să diferențieze cele două tulpini patogene în ceea ce privește agresivitatea lor pe baza perioadei de latență a populației și a densității de sporulare.

Aspecte legate de semințe

P. halstedii a fost descoperit în semințele de floarea-soarelui provenite din plante infectate în mod natural, fie sub formă de miceliu, fie sub formă de oospori (Novotel'nova, 1966). Doken (1989) a raportat că miceliul a fost găsit numai în testa și în stratul intern al pericarpului; acesta a fost absent din embrion. În urma inoculării artificiale, Cohen și Sackston (1973) au confirmat că mugurii de floarea-soarelui inoculați cu P. halstedii au fost infectate sistematic și au produs semințe infectate. Oospori au fost observați în semințele plantelor inoculate și infectate natural în câmp. Alte înregistrări de infectare a semințelor sunt cunoscute din Iran (Zad, 1978), Turcia (Döken, 1989) și Germania (Spring, 2001). Ciuperca invadează de obicei ovarul și pericarpul, dar nu reușește să se dezvolte în embrion (Novotel'nova, 1966; Döken, 1989). Infecția semințelor apare în mod regulat la plantele infectate sistemic, dacă acestea supraviețuiesc până la stadiul de înflorire. În astfel de cazuri, dezvoltarea embrionului este adesea întârziată sau inhibată. În plus, astfel de plante sunt pitice și rareori vor fi recoltate. Acestea pot crește stocul local de oospori pe un câmp, dar pentru dispersia pe distanțe lungi a agentului patogen prin semințe, ele par a fi mai puțin importante decât semințele provenite de la plante fără simptome infectate târziu (Spring, 2001). Acest din urmă tip de infecție este foarte dependent de condițiile meteorologice din timpul procesului de înflorire. Astfel, în anii secetoși, numărul semințelor contaminate cu agentul patogen este foarte scăzut și nu poate depăși câteva la o mie, dar poate fi mult mai mare după o perioadă rece și umedă în iunie/iulie. De exemplu, Spring (2001) a constatat că aproape 10% de semințe dintr-un câmp din Germania erau contaminate, iar Döken (1989), în condiții experimentale favorabile, a observat structuri fungice în 28% de semințe examinate.

Efectul asupra calității semințelor

Semințele de floarea-soarelui produse de plantele cu mucegai sunt fie subdezvoltate, fie incolore sau, rareori, au un aspect sănătos. Chiar și în acest din urmă caz, aceste semințe infectate sunt de calitate slabă; ele produc răsaduri anormale, iar rata de germinare este scăzută (Döken, 1989).

Pentru mai multe informații, consultați pagina de start a site-ului CABI.

Modelul în FieldClimate

Senzori utilizați: temperatura solului, precipitațiile, umezeala frunzelor, temperatura și umiditatea relativă a aerului.

Începem să calculăm progresul infecției atunci când temperatura este cuprinsă între 6 și 32°C, cu o temperatură optimă între 18 și 24°C, iar temperatura solului este mai mare de 10°C. În continuare, condițiile umede sunt favorabile pentru boală (ploi, umiditate relativă peste 70%).

Makrosporangia se formează la temperaturi ale solului de peste 10°C și precipitații (umiditate relativă mai mare de 70%). Resetarea are loc dacă umiditatea relativă scade sub 50%.

Dacă Makrosporangia este complet dezvoltată - încep calculele pentru o infecție a solului sau o infecție aeriană (în graficul numit infecție primară) (în condiții de umezeală a frunzelor).

Sporangiile se formează în condiții de umiditate (peste 95% r.h.), în întuneric și la temperaturi de peste 12°C. Resetarea se face în timpul zilei și când sporangii nu sunt complet dezvoltați.

În cazul în care sporangia este complet dezvoltată, calculul infecției secundare începe în funcție de temperatura aerului.

În Grafic se observă la sfârșitul lunii aprilie o perioadă umedă de lungă durată, care duce la formarea macrosporilor și la o infecție a solului (infecție primară a rădăcinilor). O infecție aeriană (numită aici infecție primară) nu a fost determinată pe 1 mai, dar condițiile au fost favorabile, astfel că a fost determinată pe 2 mai. Dacă răsadurile de floarea-soarelui sunt într-un stadiu sensibil în acel moment (abia semănate) trebuie să se țină cont de măsurile de combatere ( fungicide sistemice profilactice, în principal acizi fosforici).

Referințe:

  • Achbani EH, Lamrhari A, Serrhini MN, Douira A, Tourvieille de Labrouche D, 1999. Evaluarea eficacității tratamentelor pentru semințe împotriva Plasmopara halstedii. Bulletin OEPP, 29(4):443-449; 15 ref.
  • Achbani EH, Tourvieille D, 1993. Le tournesol au Maroc. Phytoma, 448:30-32.
  • Agrawal SC, Gupta RK, Prasad KVV, 1991. Un caz de mildiu pufos al florii-soarelui în Madhya Pradesh. Jurnalul de cercetare a semințelor oleaginoase, 8(1):126.
  • Albourie JM, Tourvieille J, Labrouhe DTde, 1998. Rezistența la metalaxil a izolatelor de Plasmopara halstedii, agentul patogen al florii-soarelui. European Journal of Plant Pathology, 104(3):235-242; 27 ref.
  • Albourie JM, Tourvieille J, Tourvieille de Labrouhe D, 1998. Rezistența la metalaxil a izolatelor franceze de mildiu. În: Gulya T, ed. Vear F, ed. Proc. Third Sunflower Downy Mildew Symposium, Fargo, SUA: ISA, 235-242.
  • Bán R, Kovács A, Körösi K, Perczel M, Turóczi G, 2014. Primul raport privind apariția unui nou patotip, 714, de Plasmopara halstedii (mildiu pufos al florii-soarelui) în Ungaria. Plant Disease, 98(11):1580-1581.
  • Bán R, Kovács A, Perczel M, Körösi K, Turóczi G, 2014. Primul raport privind distribuția crescută a patotipului 704 de Plasmopara halstedii în Ungaria. Plant Disease, 98(6):844.
  • Batinica J, Bes A, Dimic N, Numic R, Radman L, Ristanovic M, Vaclav V, 1973. O contribuție la cunoașterea faunei dăunătoare și a cauzelor bolilor de floarea-soarelui în zona de cultivare a acesteia în Republica Bosnia și Herțegovina. Radovi Poljoprivrednog Fakulteta Univerziteta u Sarajevu, 21/22(24/25):203-210.
  • Berlese AN, De-Toni JB, 1888. Phycomycetteae. În: "The Bigfoot": Sylloge fungorum, VII:242.
  • Bohár G, Vajna L, 1996. Prezența ciupercilor microscopice patogene pentru Ambrosia artemisifolia var. elatior (L.) Descourt. în Ungaria. Növényvédelem, 32:527-528.
  • Borovkov AY, McClean PE, 1993. O secvență repetată în tandem din genomul Plasmopara halstedii. Gene, 124(1):127-130.
  • Borovkova IG, Borovkov AY, McClean PE, Gulya TJ, Vick BA, 1992. Polimorfismele de lungime a fragmentelor de restricție și markerii RAPD în ADN-ul lui Plasmopara halstedii, ciuperca de mucegai a florii-soarelui. Proceedings of the 13th International Sunflower Conference Volume 2, Pisa, Italia, 7-11 septembrie 1992, 1420-1425; 9 ref.
  • Bouterige S, Robert R, Bouchara JP, Marot-Leblond A, Molinero V, Senet JM, 2000. Producerea și caracterizarea a doi anticorpi monoclonali specifici pentru Plasmopara halstedii. Applied and Environmental Microbiology, 66(8):3277-3282; 33 ref.
  • Bouterige S, Robert S, Marot-Leblond A, Senet JM, 2000. Dezvoltarea unui test ELISA pentru detectarea antigenelor Plasmopara halstedii în semințe. În: "A: Proc. 15th Int. Sunflower Conference Toulouse, Franța: ISA (F):44-49.
  • CABI/EPPO, 1998. Hărți de distribuție a dăunătorilor de carantină pentru Europa (editate de Smith, I. M. și Charles, L. M. F.). Wallingford, UK: CAB International, xviii + 768 pp.
  • CABI/EPPO, 2014. Plasmopara halstedii. Harta de distribuție. Distribution Maps of Plant Diseases, nr. octombrie. Wallingford, Regatul Unit: CABI, Harta 286 (ediția 6).
  • Choi YJ, Park MJ, Shin HD, 2009. Primul raport coreean privind apariția otrăvii pufoase pe Coreopsis lanceolata cauzată de Plasmopara halstedii. Plant Pathology, 58(6):1171.
  • CMI, 1988. Hărți de distribuție a bolilor plantelor. Harta nr. 286. Wallingford, Marea Britanie: CAB International.
  • Cohen Y, Sackson WE, 1974. Infecția semințelor ș i infecția latentă a florii-soarelui cu Plasmopara halstedii. Canadian Journal of Botany, 52:231-238.
  • Delanoe D, 1972. Biologie et epidemiologie du mildiou du tournesol (Plasmopara helianthi Novot.). CETIOM Informations Techniques, 29:1-49.
  • Delen N, Onogur E, Yildiz M, 1985. Niveluri de sensibilitate la metalaxil la șase izolate de Plasmopara helianthi Novot. Journal of Turkish Phytopathology, 14(1):31-36.
  • Delos M, Penaud A, Lafon S, Walser P, De Guenin MC, Tourvieille J, Molinero V, Tourvieille D, 1997. Le mildiou de tournesol - Une maladie toujours d'actualitT. Phytoma, 495á:15-16.
  • Doken MT, 1989. Plasmopara halstedii (Farl.) Berl. et de Toni în semințele de floarea-soarelui și rolul semințelor infectate în producerea de plante cu simptome sistemice. Journal of Phytopathology, 124(1-4):23-26.
  • Duarte LL, Choi YJ, Barreto RW, 2013. Prima raportare a mildiului pufos cauzat de Plasmopara halstedii pe Gerbera jamesonii în Brazilia. Plant Disease, 97(10):1382.
  • EPPO, 2014. Baza de date PQR. Paris, Franța: Organizația Europeană și Mediteraneană pentru Protecția Plantelor.
  • Organizația Europeană și Mediteraneană pentru Protecția Plantelor, 2008. Plasmopara halstedii. Buletin OEPP/EPPO Bulletin, 38(3):343-348.
  • Garcia GM, Gulya TJ, 1991. Distribuția rasei de mildiu al florii-soarelui în Dakota de Nord și Minnesota. În: Proceedings of the 1991 Sunflower Research Workshop, Fargo, SUA: National Sunflower Association, 3-5.
  • Giresse X, Labrouhe DTDe , Richard-Cervera S, 2007. Douăsprezece markeri polimorfici derivați din etichete de secvență exprimată pentru Plasmopara halstedii, agentul cauzal al odiosului de floarea-soarelui, 7:1363-1365.
  • Göre ME, 2009. Focare epidemice de mildiu provocate de Plasmopara halstedii la floarea-soarelui în Tracia, o parte a regiunii Marmara din Turcia. Plant Pathology, 58(2):396.
  • Gray AB, Sackston WE, Thauvette L, 1985. Dezvoltarea structurilor de infecție ale lui Plasmopara halstedii în suspensii de celule de floarea-soarelui. Canadian Journal of Botany, 63(10):1817-1819.
  • Gray B, Sackston WE, 1983. Studii asupra culturilor de țesut și a culturilor de celule de floarea-soarelui inoculate cu Plasmopara halstedii. Canadian Journal of Plant Pathology, 5:206.
  • Greathead DJ, Greathead AH, 1992. Controlul biologic al insectelor dăunătoare prin intermediul parazitoizilor și prădătorilor de insecte: baza de date BIOCAT. Biocontrol News and Information, 13(4):61N-68N.
  • Gullino ML, Garibaldi A, 1988. Bolile criptogamice ale principalelor plante de flori cultivate în ghiveci. Panorama Floricolo, 13(5):4-8.
  • Gulya TJ, 1995. O metodă simplă de evaluare a răspunsului rădăcinilor la liniile de floarea-soarelui "rezistente" la mildiu. În: "O metodă simplă de calculare a rezistenței la foc": Proceedings of the 17th Sunflower Research Workshop, Fargo, USA: National Sunflower Association, 63-66.
  • Gulya TJ, 1995. Propunere pentru un sistem revizuit de clasificare a raselor de mildiu al florii-soarelui. În: "The World of the Sunflower of the Sunflower": Proceedings of the 17th Sunflower Research Workshop, Fargo, USA: National Sunflower Association, 76-78.
  • Gulya TJ, 1996. Bolile florii-soarelui în nordul Marilor Câmpii. În: Proceedings of the 18th Sunflower Research Workshop, Fargo, SUA: National Sunflower Association, 24-27.
  • Gulya TJ, 2000. Rezistența la Metalaxil la floarea-soarelui și controlul prin intermediul geneticii și al fungicidelor alternative. În: "Gânduri de floarea-soarelui: Proc. 15th Int. Sunflower Conference Toulouse, Franța: ISA (G):16-21.
  • Gulya TJ, 2007. Distribuția raselor de Plasmopara halstedii din floarea-soarelui în întreaga lume, 3:121-134.
  • Gulya TJ, Rashid KY, Masirevic SM, 1997. Bolile florii-soarelui. În: "Bolile de floarea-soarelui": Schneiter AA, ed. Sunflower Technology and Production. Numărul 35 în seria Agronomie. Wisconsin, SUA: Amer. Soc. Agronomy, 263-379.
  • Gulya TJ, Sackston WE, Viranyi F, Masirevic S, Rashid KY, 1991. Noi rase ale agentului patogen Plasmopara halstedii în Europa și în America de Nord și de Sud. Journal of Phytopathology, 132(4):303-311.
  • Gulya TJ, Tourvieille de Labrouhe D, Masirevic S, Penaud A, Rashid K, Viranyi F, 1998. Propunere de nomenclatură standardizată și de identificare a raselor de Plasmopara halstedii (mildiu al florii-soarelui). În: "Maturarea și clasificarea nomenclaturii pentru soiurile de floarea soarelui": Gulya T, ed. Vear F, ed. Al treilea simpozion privind mildiul pufos al florii-soarelui. Fargo, SUA: ISA, 130-136.
  • Gulya TJ, Virányi F, Nowell D, Serrhini MN, Arouay K, 1996. Rase noi de mildiu al florii-soarelui din Europa și Africa. În: "Mirosul de câmpie": Proceedings of the 18th Sunflower Research Workshop, Fargo, USA: National Sunflower Association, 181-184.
  • Gulya TJ, Woods DM, Bell R, Mancl MK, 1991. Boli ale florii-soarelui în California. Plant Disease, 75(6):572-574.
  • Hall G, 1989. Înregistrări neobișnuite sau interesante de Oomicete fitopatogene. Patologia plantelor, 38(4):604-611
  • Harmon PF, Dunkle LD, Latin R, 2003. O metodă rapidă pe bază de PCR pentru detectarea Magnaporthe oryzae din rapița perenă infectată. Plant Disease, 87(9):1072-1076.
  • Heller A, Rozynek B, Spring O, 1997. Motive citologice și fiziologice pentru tipul latent de infecție la floarea-soarelui cauzată de Plasmopara halstedii. Journal of Phytopathology, 145(10):441-445; 15 ref.
  • Henning AA, Franca Neto JB, 1985. Rasa fiziologică și sursele de rezistență la otrăvire (Plasmopara halstedii (Farl.) Berlese et de Toni) în Brazilia. In: "În: Boli în Brazilia: Proceedings of the 11th International Sunflower Conference, Mar del Plata, Argentina: Volumul 2, 407-409.
  • Hong CX, 2006. Mucegaiul de la Rudbeckia fulgida cv. Goldsturm de către Plasmopara halstedii în Virginia. Plant Disease, 90(11):1461. HTTP://www.apsnet.org
  • Hua Z, Ma G, 1996. O trecere în revistă a cercetărilor privind bolile florii-soarelui în China. În: "Research of China": Proceedings of the 14th International Sunflower Conference, Beijing, China: ISC-LAAS, 754-759.
  • Intelmann F, Spring O, 2002. Analiza ADN-ului total cu ajutorul unor primeri minisateliți ș i a unor primeri cu secvențe simple repetate în vederea utilizării în cadrul studiilor de populație la Plasmopara halstedii. Canadian Journal of Microbiology, 48(6):555-559; 25 ref.
  • IPPC, 2010. Prima descoperire de Plasmopara halstedii în Marea Britanie. Raportul oficial al IPPC privind dăunătorii, nr. GBR-23/1. Roma, Italia: FAO.
  • Jardine DJ, Gulya TJ, 1994. Primul raport de mildiu pufos pe floarea-soarelui cauzat de Plasmopara halstedii în Kansas. Plant Disease, 78(2):208
  • Kinga R, Bíró J, Kovács A, Mihalovics M, Nébli L, Piszker Z, Treitz M, Végh B, Csikász T, 2011. Apariția unei noi rase de mildiu al florii-soarelui în regiunea de sud-est a Marii Câmpii Ungare. (Újabb napraforgó-peronoszpóra rassz megjelenése Magyarországon, a Dél-kelet Alföldi régióban.) Növényvédelem, 47(7):279-286.
  • Kola K, 1980. Studiu comparativ al soiurilor de floarea-soarelui pentru a evalua rezistența lor la bolile fungice în zona Zadrima. Buletini i Shkencave Bujqesore, 19:87-94.
  • Komjáti H, Walcz I, Virányi F, Zipper R, Thines M, Spring O, 2007. Caracteristicile unui izolat de Plasmopara angustiterminalis din Xanthium strumarium. European Journal of Plant Pathology, 119(4):421-428.
  • Kucmierz J, 1976. Plasmopara helianthi Novot, o nouă specie de ciupercă pentru Polonia. Fragmenta Floristica et Geobotanica, 22(3):373-375.
  • Labrouhe DDe , Walser P, Serre F, Roche S, Vear F, 2008. Relațiile dintre precipitațiile de primăvară și infecția florii-soarelui cu Plasmopara halstedii (mildiu). Cordoba, Spania, 8-12 iunie 2008. În: "În: Proceedings of the 17th International Sunflower Conference Vol. ed. by Velasco, L.. Saville, Spania: Consiliul pentru Agricultură și Pescuit, 97-102.
  • Lafon S, Penaud A, Walser P, De Guenin M-Ch, Molinero V, Mestres R, Tourvieille D, 1996. Le mildiou du tournesol toujour sou surveillance. Phytoma, 484:35-36.
  • Leite RMVBde C, Henning AA, Rodrigues SR, Oliveira MFde, 2007. Detection and variability of Plasmopara halstedii in Brazil and resistance of sunflower genotypes to downy mildew (Detecția și variabilitatea lui Plasmopara halstedii în Brazilia și evaluarea rezistenței genotipurilor de floarea-soarelui la mucegai). Summa Phytopathologica, 33(4):335-340.
  • Leppik EE, 1966. Originea și specializarea complexului Plasmopara halstedii în Compositae. Buletinul FAO de protecție a plantelor, 14:72-76.
  • Liese AR, Gotlieb AR, Sackston WE, 1982. Utilizarea testului imunoenzimatic (ELISA) pentru depistarea odiosului (Plasmopara halstedii) în floarea-soarelui. În: Proceedings of the 10th International Sunflower Conference, Surfers Paradise, Australia, 173-175.
  • Ljubich A, Gulya TJ, 1988. Infecția sistemică limitată la cotiledon a mildiului pufos. În: "In: Proceedings of the 1988 Sunflower Research Workshop, Bismarck, SUA: National Sunflower Association, 9.
  • Masirevic S, 1992. Rase de mildiu (Plasmopara halstedii) pe floarea-soarelui prezente în regiunea noastră și în lume. Zbornik Radova, 20:405-408.
  • Mayee CD, Patil MA, 1987. Miliardul pufos al florii-soarelui în India. Tropical Pest Management, 33(1):81-82
  • Melero-Vara JM, Garcia-Baudin C, Lopez-Herrera CJ, Jimenez-Diaz RM, 1982. Combaterea otrăvirii cu metalaxil a florii-soarelui. Plant Disease, 66(2):132-135.
  • Melero-Vara JM, Molinero Luiz L, Merino A, Dominguez J, 1996. Raze de Plasmopara halstedii prezente în Spania și evaluarea susceptibilității în hibrizi comerciali. În: Proceedings of the ISA Symposium I, Disease Tolerance in Sunflower, Beijing, China: Asociația Internațională a Floarea-soarelui, 7-13.
  • Meliala C, Vear F, Labrouhe DTde, 2000. Relația dintre data de infectare a turnesolului (Plasmopara halstedii) și dezvoltarea simptomelor. Helia, 23(32):35-44.
  • Molinero-Ruiz ML, Domfnguez J, Melero-Vara JM, 2002. Rase de izolate de Plasmopara halstedii din Spania și studii privind virulența lor. Plant Disease, 86(7):736-740; 28 ref.
  • Moses GJ, 1989. O nouă apariție a otrăvii pufoase a florii-soarelui în Andhra Pradesh. Revista de cercetare APAU, 17(1):73
  • Nandeeshkumar P, Ramachandra K, Prakash HS, Niranjana SR, Shetty H, 2008. Inducerea rezistenței împotriva odiosului la floarea-soarelui de către rizobacterii, 3(4):255-262.
  • Nandeeshkumar P, Sarosh BR, Kini KR, Prakash HS, Shetty HS, 2009. Elicitarea rezistenței și a proteinelor legate de apărare de către acidul beta-aminobutiric la floarea-soarelui împotriva agentului patogen Plasmopara halstedii. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 42(11):1020-1032.
  • Nandeeshkumar P, Sudisha J, Ramachandra KK, Prakash HS, Niranjana SR, Shekar SH, 2008. Rezistența indusă de chitosan la mildiu la floarea-soarelui cauzată de Plasmopara halstedii. PMPP Physiological and Molecular Plant Pathology, 72(4/6):188-194.
  • Nikolov G, 1981. Apron 35 SD, un preparat eficient în combaterea mildiului pufos al florii-soarelui. Rastitelna Zashchita, 29(3):40-41
  • Nishimura M, 1922. Studii la Plasmopara halstedii. J. Coll. Agric, 3(XI):185-210.
  • Novotel'nova NS, 1966. Miliardul pufos al florii-soarelui. Moscova, URSS: Nauka.
  • Onan E, Onogur E, 1989. Miliardul pufos al florii-soarelui (Plasmopara helianthi Novot.). Ege Universitesi Ziraat Fakultesi Dergisi, 26(1):271-286.
  • Onan E, Onogur E, 1991. Studii privind relația dintre gazda și agentul patogen al odiosului de floarea-soarelui (Plasmopara helianthi Novot.). Journal of Turkish Phytopathology, 20(1):1-10.
  • Oros G, Viranyi F, 1987. Evaluarea în seră a fungicidelor pentru combaterea otrăvirii florii-soarelui (Plasmopara halstedii). Analele de biologie aplicată, 110(1):53-63.
  • Patil MA, Mayee CD, 1988. Investigații privind mildiul pufos al florii-soarelui în India. În: India: Proceedings of the 12th International Sunflower Conference, Novi Sad, Iugoslavia: 2:42.
  • Patil MA, Phad HB, Ramtirthkar MS, 1993. Prezența și distribuția mildiului pufos al florii-soarelui recent introdus în Maharashtra. Jurnalul universităților agricole din Maharashtra, 18(1):129-130.
  • Rahmani Y, Madjidieh-Ghassemi S, 1975. Cercetări privind rezistența relativă a diferitelor soiuri și linii consangvinizate de floarea-soarelui la otrăvul Plasmopara helianthi Novt. în seră și în testul experimental pe câmp, 1973. Iranian Journal of Plant Pathology, 11(3/4):96-104; 42-45.
  • Rashid KY, 1991. Miliardul pufos al florii-soarelui în Manitoba. În: Proceedings of the Sunflower Research Workshop, Fargo, SUA: National Sunflower Association, 12.
  • Rashid KY, 1993. Incidența și virulența Plasmopara halstedii pe floarea-soarelui în vestul Canadei în perioada 1988-1991. Canadian Journal of Plant Pathology, 15(3):206-210.
  • Rivera Y, Rane K, Crouch JA, 2014. Prima raportare a mildw pufoasă cauzată de Plasmopara halstedii pe Susan cu ochi negri (Rudbeckia fulgida cv. 'Goldsturm') în Maryland. Plant Disease, 98(7):1005-1006.
  • Roeckel-Drevet P, Coelho V, Tourvieille J, Nicolas P, Labrouhe DTde, 1997. Lipsa variabilității genetice la rasele franceze identificate de Plasmopara halstedii, cauza odiosului la floarea-soarelui Helianthus annuus. Canadian Journal of Microbiology, 43(3):260-263; 23 ref.
  • Roeckel-Drevet P, Tourvieille J, Drevet JR, Says-Lesage V, Nicolas P, Labrouhe DTde, 1999. Dezvoltarea unui test de diagnosticare prin reacția în lanț a polimerazei pentru detectarea agentului patogen biotrofic Plasmopara halstedii în floarea-soarelui. Canadian Journal of Microbiology, 45(9):797-803; 27 ref.
  • Rozynek B, Spring O, 2000. Pathotipuri de mildiu al florii-soarelui în părțile sudice ale Germaniei. Helia, 23(32):27-34; 18 ref.
  • Rozynek B, Spring O, 2001. Inocularea discului foliar, un test rapid și precis pentru depistarea toleranței la metalaxil în cazul mildiozului la floarea-soarelui. Journal of Phytopathology, 149(6):309-312; 17 ref.
  • Ruiz MLM, Dominguez J, Vara JMM, Gulya TJ, 2000. Toleranța la metalaxil la izolatele spaniole de Plasmopara halstedii. În: Toleranță la molima de la Plasmodepalma: Proc. 15th Int. Sunflower Conference Toulouse, Franța: ISA, (G):11-15.
  • Sackston WE, 1981. Miliardul pufos al florii-soarelui. În: Spencer DE, ed. The Downy Mildews. Londra, Marea Britanie: Academic Press, 545-575.
  • Sackston WE, 1992. Pe o bandă de alergare: reproducerea florii-soarelui pentru rezistența la boli. Annual Review of Phytopathology, 30:529-551; 123 ref.
  • Sackston WE, Anas O, Paulitz T, 1992. Combaterea biologică a mildiozului la floarea-soarelui. In: "Controlul biologic biologic biologic pentru combaterea biologică biologică a floarei de câmp: Abstracts of the American Phytopathological Society North-East Division Meeting, Portland, SUA: 33.
  • Sakr N, Ducher M, Tourvieille J, Walser P, Vear F, Labrouhe DTde, 2009. O metodă de măsurare a agresivității lui Plasmopara halstedii (mildiu al florii-soarelui). Journal of Phytopathology, 157(2):133-136.
  • Says-Lesage V, Meliala C, Nicolas P, Roeckel-Drevet P, Tourvieille de Labrouhe D, Archambault D, Billaud F, 2001. Test molecular pentru a demonstra prezența mucegaiului (Plasmopara halstedii) în semințele de floarea-soarelui. OCL - Ole^acute~agineux, Corps Gras, Lipides, 8(3):258-260; 5 ref.
  • Schuck E, Jobim CIP, 1988. Boli ale florii-soarelui (Helianthus annuus L.) în Viamao și Santo Augusto, Rio Grande do Sul. Agronomia Sulriograndense, 24(2):221-232; 12 ref.
  • Simay EI, 1993. Incidența unor microfungi rari observați în zonele Budateteny și Cinkota din Budapesta. Mikologiai Kozlemenyek, 32(1-2):81-89.
  • Skoric D, 1994. Reproducerea florii-soarelui pentru rezistența la bolile dominante. În: "Cultivarea florii de floarea-soarelui: Proceedings of the EUCARPIA Oil and Protein Crops Section, Symposium on Breeding of Oil and Protein Crops, Albena, Bulgaria, 30-48.
  • Primăvara O, 2000. Reproducerea sexuată homotalică la Plasmopara halstedii, otrăvul pufos al florii-soarelui. Helia, 23(32):19-26; 13 ref.
  • Primăvara O, 2001. Infecții nesistemice ale florii-soarelui cu Plasmopara halstedii și rolul lor presupus în distribuția agentului patogen. Journal of Plant Diseases and Protection, 108:329-336.
  • Spring O, Benz A, Faust V, 1991. Impactul infecției cu oja (Plasmopara halstedii) asupra dezvoltării și metabolismului florii-soarelui. Zeitschrift fur Pflanzenkrankheiten und Pflanzenschutz, 98(6):597-604.
  • Spring O, Haas K, 2002. Compoziția acizilor grași din Plasmopara halstedii și semnificația sa taxonomică. European Journal of Plant Pathology, 108(3):263-267; 20 ref.
  • Spring O, Miltner F, Gulya TJ, 1994. Rase noi de otrăvire a florii-soarelui (Plasmopara halstedii) în Germania. Journal of Phytopathology, 142(3-4):241-244.
  • Spring O, Rozynek B, Zipper R, 1998. Infecții cu spor unic cu mildiu al florii-soarelui. Journal of Phytopathology, 146(11/12):577-579; 7 ref.
  • Spring O, Zipper R, 2000. Izolarea oosporilor de Plasmopara halstedii (Miliardul pufos al florii-soarelui) și studii microscopice privind germinația oosporilor. Journal of Phytopathology, 148(4):227-231; 15 ref.
  • Spring O, Zipper R, 2006. Dovezi ale recombinării genetice asexuate la Plasmopara halstedii, otrăvirea pucioasă a florii-soarelui. Mycological Research, 110(6):657-663.
  • Sudisha J, Niranjana SR, Sukanya SL, Girijamba R, Devi NL, Shetty HS, 2010. Eficacitatea relativă a formulărilor de strobilurină în controlul odiosului la floarea-soarelui. Journal of Pest Science, 83(4):461-470.
  • Thanassoulopoulos CC, Mappas CB, 1992. Prima semnalare a otrăvirii pufoase a florii-soarelui în Grecia. Plant Disease, 76(5):539
  • Tourvieille J, Roeckel-Drevet P, Nicolas P, Tourvieille de Labrouhe D, 1996. Caracterizarea raselor de mildiu al florii-soarelui (Plasmopara halstedii) prin RAPD. In: "În: Proceedings of the 14th International Sunflower Conference, Beijing, 781-785.
  • Vida R, 1966. Miliardul pufos al florii-soarelui: o revenire semnificativă. Növényvédelem, 32:533-535.
  • Virányi F, 1984. Cercetări recente privind mildiul pufos al florii-soarelui în Ungaria. Helia, 7:35-38.
  • Virányi F, 1988. Factorii care influențează formarea oosporilor la Plasmopara halstedii. În: "The Foliasmode": Proceedings of the 12th International Sunflower Conference, Novi Sad, Yugoslavia, Vol, 2:32.
  • Viranyi F, Gulya TJ, 1995. Variația între izolate pentru virulență la Plasmopara halstedii (ocarisul florii-soarelui) din Ungaria. Plant Pathology, 44(4):619-624.
  • Virányi F, Gulya TJ, 1995a. Variația patogenă la Plasmopara halstedii. În: "The Maladius H: Abstracts of papers of the 1st International Symposium on Downy Mildew Fungi, Gwatt, Elveția: Federation of European Microbiological Societies, Ciba-Geigy.
  • Virányi F, Gulya TJ, 1996. Expresia rezistenței în patosistemul Plasmopara halstedii - floarea-soarelui. În: "Grădiniță de soare": Proceedings of the ISA Symposium I, Disease Tolerance in Sunflower, Beijing, China: Asociația Internațională a Floarea-soarelui, China, China, 14-21.
  • Viranyi F, Sziraki I, 1986. Stabilirea de culturi duble de Plasmopara halstedii și floarea-soarelui. Transactions of the British Mycological Society, 87(2):323-325.
  • Viranyi F, Walcz I, 2000. Studii de populație la Plasmopara halstedii: specificitatea gazdei și toleranța la ciuperci. În: "Toleranța la toleranță la ciuperci": Proceedings of the 15th International Sunflower Conference Toulouse, Franța: ISA, (I):55-60.
  • Walcz I, Bogßr K, Virßnyi F, 2000. Studiu asupra unui izolat de ambrozie de Plasmopara halstedii. Helia, 23(33):19-24; 8 ref.
  • Yang SM, Wei SE, 1988. Boli ale florii-soarelui cultivate în provincia Liaoning, Republica Populară Chineză. Plant Disease, 72(6):546
  • Yorinori FT, Henning AA, Ferreira LP, Homechin M, 1985. Boli ale florii-soarelui în Brazilia. În: Boli ale florii-soarelui: Proceedings of the 11th International Sunflower Conference, Mar del Plata, Brazilia, 459.
  • Zad J, 1978. Transmiterea otrăvului de floarea-soarelui prin semințe. Iranian Journal of Plant Pathology, 14(1/4):1-2; 1-7.
  • Zazzerini A, 1978. Răspândirea lui Plasmopara helianthi Novot în funcție de pantă. Phytopathologia Mediterranea, 17(3):153-156.
  • Zazzerini A, 1983. Boala Peronospora (Plasmopara helianthi Novot.) la floarea-soarelui: rase fiziologice ale parazitului și metode de identificare a materialului infectat. Informatore Fitopatologico, 33(2):117-119.
  • Zimmer DE, 1974. Specializarea fiziologică între rasele de Plasmopara halstedii din America și Europa. Phytopathology, 64(11):1465-1467

Putregaiul Sclerotinia

Germinația carpogenă a sclerozei este stimulată de perioadele de umiditate continuă a solului. La suprafața solului se formează apoteci din care ascosporii sunt eliberați în aer. Infecția majorității speciilor de culturi este asociată în principal cu ascosporii, dar, de obicei, nu se produce o infecție directă a țesuturilor vegetale sănătoase și intacte prin ascosporii germinați. În schimb, infectarea țesuturilor frunzelor și tulpinilor de plante sănătoase se produce numai atunci când ascosporii germinați colonizează țesuturile moarte sau în curs de senescență, de obicei părți ale florilor, cum ar fi petalele abscente, înainte de formarea structurilor de infecție și de pătrundere. Germinarea miceliogenă a scleroțiilor la suprafața solului poate duce, de asemenea, la colonizarea materiei organice moarte, cu infectarea ulterioară a plantelor vii adiacente. Cu toate acestea, în cazul anumitor culturi, de exemplu floarea-soarelui, germinarea miceliogenă a scleroțiilor poate iniția direct procesul de infectare a rădăcinilor și a tulpinii bazale, ceea ce duce la ofilire. Stimulentul pentru germinarea miceliogenă și infecția la floarea-soarelui nu este cunoscut, dar depinde probabil de semnalele nutriționale din rizosferă provenite de la plantele gazdă.

Procesul de infectare

Infectarea țesuturilor sănătoase depinde de formarea unui appressorium, care poate avea o structură simplă sau complexă, în funcție de suprafața gazdei. În majoritatea cazurilor, penetrarea se face direct prin cuticulă și nu prin stomate. Appressoria se dezvoltă din ramificarea dihotomică terminală a hifelor care cresc pe suprafața gazdei și constă într-un tampon de hifă scurtă, largă, multi-septată, orientată perpendicular pe suprafața gazdei, de care este atașată prin mucilagiu. Appresoriile complexe sunt adesea denumite "perne de infecție". Deși lucrătorii anteriori considerau că penetrarea cuticulei este un proces pur mecanic, studiile ultrastructurale au demonstrat că digestia enzimatică a cuticulei joacă, de asemenea, un rol în procesul de penetrare. Se cunosc puține informații despre S. sclerotiorum cutinaze, însă genomul codifică cel puțin patru enzime asemănătoare cutinazelor (Hegedus nepublicat). O veziculă mare, formată la vârful appressoriumului înainte de penetrare, pare să fie eliberată în cuticula gazdei în timpul penetrării. După penetrarea cuticulei, se formează o veziculă subcuticulară din care se desprind hifele mari care cresc în evantai și dizolvă peretele subcuticular al epidermei.

Infecție prin degradarea enzimatică a celulelor epidemice: Acidul oxalic acționează împreună cu enzimele care degradează peretele celular, cum ar fi poligalacturonază (PG), pentru a provoca distrugerea țesutului gazdă prin crearea unui mediu propice pentru atacul PG asupra pectinei din lamela mijlocie. Aceasta, la rândul său, eliberează derivați cu greutate moleculară mică care induc expresia unor gene PG suplimentare. Într-adevăr, activitatea generală a PG este indusă de pectină sau de monosacaridele derivate din pectină, cum ar fi acidul galacturonic, și este reprimată de prezența glucozei. Examinarea modelelor de expresie a genelor Sspg individuale a arătat că interacțiunea dintre PG-uri și gazdă în timpul diferitelor etape ale infecției este fin coordonată. (Dwayne D. Hegedus *, S. Roger Rimmer: Sclerotinia sclerotiorum: Când ''a fi sau a nu fi'' un agent patogen? FEMS Microbiology Letters 251 (2005) 177-184)

Căutarea condițiilor climatice pentru infecția de S. sclerotiorum trebuie să ia în considerare formarea apotecilor, sporularea, infecția directă prin apoteci (chiar dacă nu este foarte frecventă) și infecția din miceliile stabilite prin degradarea encimatică a celulelor epidemice. Formarea apotecilor și sporularea are loc în cazul în care o ploaie de peste 8 mm este urmată de o perioadă de umiditate relativă ridicată care durează mai mult de 20 de ore la o temperatură optimă cuprinsă între 21°C și 26°C.
Infecția directă prin apoteotice se poate aștepta după o perioadă de umezeală a frunzelor urmată de 16 ore de umiditate relativă mai mare decât 90% în condiții optime de 21°C până la 26°C ("infecție cu appressorii"). În schimb, creștere saprofitică urmată de degradarea encimotică a celulelor epidermice ("infecție hidrolitică") poate fi așteptată la o umiditate relativă ușor mai mică de 80%, care durează 24 de ore în condiții optime de 21°C-26°C.

Literatură:

  • Lumsden, R.D. (1976) Enzimele pectolitice ale Sclerotinia sclerotiorum și localizarea lor pe fasolea infectată. Can. J. Bot. 54,2630-2641.
  • Tariq, V.N. și Jeffries, P. (1984) Formarea Appressorium de către Sclerotinia sclerotiorum: microscopie electronică cu scanare. Trans. Brit. Mycol. Soc. 82, 645-651.
  • Boyle, C. (1921) Studii de fiziologie a parazitismului. VI. Infecția cu Sclerotinia libertiana. Ann. Bot. 35, 337-347.
  • Abawi, G.S., Polach, F.J. și Molin, W.T. (1975) Infecția fasolei cu ascospori de Whetzelinia sclerotiorum. Phytopathology 65, 673-678.
  • Tariq, V.N. și Jeffries, P. (1986) Ultrastructura de penetrare a Phaseolus spp. de către Sclerotinia sclerotiorum. Can. J. Bot. 64, 2909- 2915.
  • Marciano, P., Di Lenna, P. ș i Magro, P. (1983) Acidul oxalic, enzimele care degradează peretele celular ș i pH-ul în patogeneză ș i semnificația lor în virulența a doi izolate de Sclerotinia sclerotiorum pe floarea-soarelui. Physiol. Plant Pathol. 22, 339-345.
  • Fraissinet-Tachet, L. și Fevre, M. (1996) Reglarea prin acid galacturonic a producției de enzime ppectinolitice de către Sclerotinia sclerotiorum. Curr. Microbiol. 33, 49-53.

Utilizarea practică a modelului Sclerotinia

Modelul de infecție a piciorului alb arată perioadele în care se așteaptă formarea apotecilor. Dacă aceste perioade corespund cu perioada de înflorire a rapiței sau a canolei, trebuie să ne așteptăm la S. sclerotiorum infecții în timpul unei perioade umede. Sporii formați în apoteci pot fi disponibili timp de una până la câteva zile. Oportunitatea infecțiilor este indicată de calculul progresului infecției pentru infecțiile directe sau indirecte prin appressorii sau prin degradarea peretelui celular encimat. În cazul în care linia de progresie a infecției ajunge la 100%, trebuie să se considere că există o infecție. Aceste infecții ar trebui să fie acoperite preventiv sau cu un fungicid cu acțiune curativă împotriva S. sclerotiorum trebuie să fie utilizat.

Mucegai gri

Mucegai gri (Botrytis cinerea) este o boală devastatoare cu un impact economic ridicat în producție. B. cinerea infectează florile și fructele aproape de maturitate.
Acest agent patogen fungic are o gamă foarte largă de gazde, infectând peste 200 de gazde diferite. Creșterea fungică există în mod saprofit și parazitar.

Simptomele

La floarea-soarelui, agentul patogen provoacă un mucegai cenușiu pe cap și pe tulpină. Între timp, frunzele încep să se usuce. Aceste simptome apar în timpul maturării boabelor de pe căpățână. Se observă pete brune pe partea din spate. Aceste pete sunt acoperite de miceliul fungic și de spori, dând aspectul unei pulberi. Sporii sunt capabili să se răspândească în condiții de vreme umedă.

Scleroții negri lipsiți de măduvă apar pe resturile de cultură după recoltare sau direct pe plante, dacă acestea sunt recoltate prea târziu.

Ciuperca iernează în timpul iernii pe suprafața solului sau în sol sub formă de miceliu sau scleroți. Primăvara, forma de iernare începe să germineze și să producă conidii. Aceste conidii sunt răspândite de vânt și de ploaie și infectează țesuturile plantelor noi.

Germinarea este posibilă la o umiditate relativă de peste 85%. Temperatura optimă de germinare este de 18°C. Ciuperca patogenă se poate reproduce de mai multe ori.

Opțiuni de control: Controlul semințelor poate proteja plantele de damping- off. Controlul chimic este dificil din cauza rezistenței agentului patogen. Prin urmare, se încearcă strategii de control natural cu Trichoderma harzianum.

Condiții pentru modelarea infecției

B. cinerea infecțiile sunt legate de umiditatea liberă. Prin urmare, în producția în câmp deschis se determină umiditatea frunzelor, care este un bun indicator.
Bulger et al. (1987) au studiat corelația dintre perioadele de umezeală a frunzelor în timpul înfloririi și apariția mucegaiului cenușiu pe fructe. Aceștia au constatat că, pentru un risc mai mare de infecție la 20°C, este necesară o perioadă mai mare de 32 de ore de umezeală a frunzelor. La temperaturi mai scăzute, perioadele de umezeală a frunzelor trebuie să fie mai lungi pentru infectarea bolii.

FieldClimate indică riscul de Botrytis cinerea pe baza perioadelor de umezeală a frunzelor și a temperaturii din timpul acestor perioade.

Graficul de mai jos arată durata de umezeală a frunzelor în funcție de temperatura reală necesară pentru o Botrytis infecție. În cazul în care riscul este mai mare de 0, fiecare perioadă de umezeală a frunzelor mai mare de 4 ore va crește riscul cu același raport.
O zi cu o perioadă de umezeală a frunzelor mai scurtă de 4 ore este considerată a fi o zi uscată și va reduce riscul cu 20% din valoarea reală.

Utilizarea practică a modelului "Grey Mould": Modelul indică perioadele cu un risc de Botrytis infecție. Această perioadă de risc din timpul înfloririi căpșunilor va duce la fructe infectate. Cu cât perioada de risc este mai lungă și cu cât riscul este mai mare, cu atât mai mare este probabilitatea și numărul de fructe infectate. Riscul, care poate fi luat în considerare, depinde de piață. Cultivatorii care își vând fructele la supermarketuri nu își vor asuma niciun risc, știind că nu pot vinde fructe infectate. În timp ce cultivatorii care își vând fructele direct oamenilor își pot asuma un risc mai mare.

Literatură:

  • Bulger M.A., Ellis M. A., Madden L. V. (1987): Influența temperaturii și a duratei de umezeală asupra infecției florilor de căpșun cu Botrytis cinerea și a incidenței bolii asupra fructelor provenite din flori infectate. Ecology and Epidemiology; Vol 77 (8): 1225-1230.
  • Sosa-Alvarez M., Madden L.V., Ellis M.A. (1995): Effects of temperature and wetness duration on sporulation of Botrytis cinerea on strawberry leaf residues. Bolile plantelor 79, 609-615.

TomCast

TOMCAST (TOMato disease foreCASTing) este un model computerizat bazat pe date de teren care încearcă să prezică dezvoltarea bolilor fungice, și anume a mucegaiului timpuriu, a pătării frunzelor cu Septoria și a antracnozei la tomate. Aparatele de înregistrare a datelor amplasate pe teren înregistrează din oră în oră datele privind umiditatea frunzelor și temperatura. Aceste date au fost analizate pe o perioadă de 24 de ore și pot duce la formarea unui Valoarea de gravitate a bolii (DSV); în esență, o creștere a dezvoltării bolii. Pe măsură ce DSV se acumulează, presiunea bolii continuă să crească asupra culturii. Atunci când numărul de DSV acumulate depășește intervalul de pulverizare, se recomandă aplicarea unui fungicid pentru a atenua presiunea bolii.

TOMCAST este derivat din modelul original F.A.S.T. (Forecasting Alternaria solani on Tomatoes), dezvoltat de doctorii Madden, Pennypacker și MacNab? de la Pennsylvania State University (PSU). Modelul F.A.S.T. de la PSU a fost modificat ulterior de Dr. Pitblado de la Colegiul Ridgetown din Ontario în ceea ce recunoaștem acum ca fiind modelul TOMCAST utilizat de Ohio State University Extension. DSV sunt: O valoare de gravitate a bolii (DSV) este unitatea de măsură dată unui anumit spor de dezvoltare a bolii (arsură timpurie). Cu alte cuvinte, o DSV este o reprezentare numerică a rapidității sau a lentorii cu care se acumulează boala (arsura timpurie) într-un câmp de tomate. DSV este determinat de doi factori: umiditatea frunzelor și temperatura în timpul orelor de "umezeală a frunzelor". Pe măsură ce numărul de ore de umezeală a frunzelor și temperatura crește, DSV se acumulează într-un ritm mai rapid. Consultați graficul de mai jos privind valoarea de severitate a bolilor.

Dimpotrivă, atunci când sunt mai puține ore de umezeală a frunzelor și temperatura este mai scăzută, DSV se acumulează încet sau deloc. Atunci când numărul total de DSV acumulate depășește o limită prestabilită, numită interval de pulverizare sau prag, se recomandă o pulverizare cu fungicid pentru a proteja frunzele și fructele de dezvoltarea bolii.

Intervalul de stropire (care determină când trebuie să pulverizați) poate varia între 15-20 DSV. DSV-ul exact pe care ar trebui să îl folosească un cultivator este de obicei furnizat de către procesator și depinde de calitatea fructelor și de utilizarea finală a roșiilor. Urmarea unui interval de pulverizare de 15 DSV reprezintă o utilizare conservatoare a sistemului TOMCAST, ceea ce înseamnă că veți pulveriza mai des decât un cultivator care utilizează un interval de pulverizare de 19 DSV cu sistemul TOMCAST. Compromisul constă în numărul de stropiri aplicate în timpul sezonului și în potențialul de diferență în ceea ce privește calitatea fructelor.

La Universitatea de Stat din Michigan au fost inițiate studii pentru a testa sistemul de prognoză a bolilor, TomCast, în vederea utilizării acestuia în gestionarea bășicilor foliare la morcov. TomCast a fost utilizat comercial în producția de tomate și a fost recent adaptat pentru a fi utilizat în gestionarea bolilor la sparanghel. Morcovii de procesare "Early Gold" au fost plantați cu un semănător de precizie cu vid la MSU Muck Soils Research Farm în trei rânduri, la o distanță de 18 centimetri unul de celălalt, pe un pat supraînălțat cu o lungime de 15 metri. Paturile de morcovi au fost distanțate pe centre de 64 de inci, iar distanța dintre rânduri a fost de 1 inci. Fiecare dintre cele patru repetiții ale experimentului a fost amplasată în blocuri separate de morcovi, care au fost formate din 36 de paturi. Șaptesprezece paturi de tratament cu o lungime de 20 de picioare au fost amplasate aleatoriu în fiecare repetiție, în formă de tablă de șah. Tratamentele au fost aplicate cu un pulverizator cu rucsac cu CO2 care a fost calibrat pentru a furniza 50 de galoane pe acru de soluție de pulverizare, folosind duze cu ventilator plat 8002. Tratamentele au constat în aplicații netratate și cu program diferit de Bravo Ultrex 82,5WDG (22,4 oz/A), alternate cu Quadris 2.08SC (6,2 fl oz/A). Programul chimic a fost aplicat pe baza unui program calendaristic de 10 zile, precum și atunci când a fost prevăzut de către TomCast disease forecaster. Trei praguri de predicție diferite de 15, 20 și 25 DSV au fost folosite pentru a planifica aplicațiile de fungicide. Atunci când valorile zilnice cumulate ale DSV atingeau pragul stabilit, se aplica o pulverizare. Fiecare regim de tratament a fost inițiat la patru niveluri diferite de presiune a bolii (0%, urme, 5% și 10% de arsură foliară). Primele tratamente au fost aplicate la 2 iulie, iar ultima aplicare a oricărui tratament a fost efectuată la 21 septembrie. Zece picioare din fiecare rând central al blocurilor de pulverizare au fost marcate înainte de prima aplicare și au fost folosite pentru evaluarea săptămânală a bolilor (a se vedea graficele de mai jos). Producțiile au fost obținute din aceeași secțiune de trei metri de rând, prin recoltarea manuală a morcovilor, prin topping și cântărire.

Acest lucru indică faptul că primul tratament la morcov ar trebui făcut imediat ce se constată prima incidență a bolii în câmp. De acum încolo, a funcționat bine utilizarea modelului TomCast cu un prag de 20 DSV acumulate de la ultima pulverizare.

Fieldclimate.com determină gravitatea unei infecții cu Alternaria în două modele diferite:

Sursa: Jim Jasinski, coordonator TOMCAST pentru OHIO, INDIANA și MICHIGAN

Modelul TomCast Alternaria

În funcție de condițiile climatice, de orele de umezeală a frunzelor și de temperatura aerului, se determină valorile de gravitate ale unei infecții (de la 0 la 4, a se vedea tabelul de mai sus).

Echipament recomandat

Verificați ce set de senzori este necesar pentru monitorizarea bolilor potențiale ale acestei culturi.