Buğdayda iki önemli Septoria hastalığı vardır. Bunlar Septoria tritici lekesi, fungus tarafından kışkırtılır Septoria tritici (teleomorf: Mycophaerella graminicola) ve Septoria nodorum Septoria nodorum (teleomorf: Leptosphaeria nodorum) mantarının neden olduğu leke. Her iki hastalık da yüzde 31 ila 53 arasında değişen ciddi verim kayıplarına neden olmaktadır (Eyal, 1981; Babadoost ve Herbert, 1984; Polley ve Thomas, 1991). Dünya çapında, çoğunlukla yüksek yağış alan bölgelerde yetişen 50 milyon hektardan fazla buğday etkilenmektedir. Son 25 yıldır bu hastalıklar artmakta ve bazı bölgelerde buğday üretimini sınırlayan önemli bir faktör haline gelmektedir. Şiddetli salgınlar altında, duyarlı buğday çeşitlerinin taneleri buruşur ve öğütülmeye uygun değildir. Buğdayda Septoria tritici lekesi ve Septoria nodorum lekesi salgınları, uygun hava koşulları (sık yağmurlar ve ılımlı sıcaklıklar), özel kültürel uygulamalar, inokulumun mevcudiyeti ve duyarlı buğday çeşitlerinin varlığı ile ilişkilidir (Eyal ve ark., 1987).

Septoria spp. Biyoloji

Erick De Wolf'u takiben, Septoria Tritici Lekesi, Kansas Eyalet Üniversitesi, Nisan 2008 Septoria tritici benekli yaprak lekesi olarak bilinen lekeye mantar neden olur Septoria tritici. Dünyanın buğday yetiştirilen tüm bölgelerine yayılmıştır ve birçok bölgede ciddi bir sorundur. Septoria tritici lekesi en çok, hastalık sezonun sonlarına doğru duyarlı çeşitlerin üst yapraklarına ve başaklarına saldırdığında zarar verir.

Semptomlar

Septoria tritici Leke belirtileri ilk olarak sonbaharda ortaya çıkar. İlk belirtiler yapraklar üzerinde küçük sarı lekelerdir. Bu lezyonlar yaşlandıkça genellikle açık ten rengine dönüşür ve mantar meyve gövdeleri kılçıklardaki lezyonlara gömülü olarak görülebilir. Lezyonlar düzensiz şekildedir ve eliptikten uzun ve dar olana kadar değişir (Şekil 1). Lezyonlar, mantarın meyve veren gövdeleri olan küçük, yuvarlak, siyah benekler içerir. Siyah meyve gövdeleri karabiber tanelerine benzer ve genellikle bir büyüteç yardımı olmadan görülebilir. Hastalık alt yapraklarda başlar ve yavaş yavaş bayrak yaprağına doğru ilerler. Yaprak kılıfları da saldırıya karşı hassastır. Yağışlı yıllarda, benekli yaprak lekesi mantarı başlara geçebilir ve glume blotch olarak bilinen glumes ve kılçıklarda kahverengi lezyonlara neden olabilir. Bu lezyonlar yaşlandıkça genellikle açık ten rengine dönüşür ve mantar meyve gövdeleri genellikle kılçıklardaki lezyonlara gömülü olarak görülür.

Glume blotch fazı önemli verim kaybına neden olabilir, ancak hastalık şiddeti ile verim kaybı arasındaki ilişki iyi anlaşılmamıştır. Septoria tritici leke, çok benzer semptomlara sahip diğer yaprak hastalıkları ile karıştırılabilir: tan lekesi ve Stagonspora nodorum örneğin leke. Bitkilerin bu yaprak hastalıklarından birden fazlasıyla enfekte olması yaygındır ve hangi hastalıkların en yaygın olduğunu doğru bir şekilde teşhis etmek için laboratuvar incelemesi gerekebilir. Glume blotch'un nedenini ayırt etmek için neredeyse her zaman laboratuvar incelemesi gereklidir. Türlerin bilinmesi sprey kararları için önemli değildir çünkü her üç hastalık da fungisitlere benzer şekilde yanıt verir. Bununla birlikte, hangi hastalıkların en yaygın olduğunu bilmek çeşit seçiminin önemli bir parçasıdır çünkü farklı genler hastalıklara karşı direnci kontrol eder.
Septoria tritici lekesini diğer hastalıklardan ayırt etmenin en güvenilir yolu siyah mantar meyve gövdelerinin varlığıdır. Tan lekesine neden olan fungus bu tür bir üreme yapısı üretmez. Bununla birlikte, nemli koşullar altında, Stagonospora nodorum lekesine neden olan fungus açık kahverengi meyve gövdeleri üretecektir. Renk farklılığına ek olarak, bu yapılar Septoria tritici tarafından üretilenlerden de daha küçüktür.

Yaşam Döngüsü

Septoria tritici Yaz boyunca bir önceki buğday mahsulünün kalıntıları üzerinde hayatta kalır ve sonbaharda enfeksiyonları başlatır. Mantarın diğer çim konukçuları ve buğday tohumu ile birlikte hayatta kalabildiğine dair bazı kanıtlar vardır. Bu mantar kaynakları muhtemelen en çok buğday kalıntıları olmadığında önemlidir. Münavebe veya kalıntı yönetimi uygulamalarına bakılmaksızın, sonbahar enfeksiyonlarını başlatmak için genellikle yeterli inokulum vardır. Septoria tritici leke, serin ve yağışlı havalar tarafından tercih edilir. Optimum sıcaklık aralığı 16 ila 21 °C'dir; ancak enfeksiyonlar kış aylarında 5 °C'ye kadar düşük sıcaklıklarda meydana gelebilir. Enfeksiyon en az 6 saatlik yaprak ıslaklığı gerektirir ve maksimum enfeksiyon için 48 saate kadar ıslaklık gereklidir. Enfeksiyon gerçekleştikten sonra, fungusun karakteristik siyah meyve gövdelerini geliştirmesi ve yeni nesil sporlar üretmesi 21 ila 28 gün sürer. Bu meyve gövdelerinde üretilen sporlar yapışkan kütleler halinde dışarı atılır ve bunların üst yapraklara ve başlara sıçraması için yağmur gerekir.

Enfeksiyon Septoria tritici

Pycnidiospores of S. tritici Serbest suda sporun her iki ucundan veya interkalar hücrelerden çimlenir (Weber, 1922). Spor çimlenmesi yaprakla temastan yaklaşık 12 saat sonrasına kadar başlamaz. Çim tüpleri yaprak yüzeyi üzerinde rastgele büyür. Weber (1922) sadece epidermal hücreler arasında doğrudan penetrasyon gözlemlemiştir, ancak diğerleri hem açık hem de kapalı stomalardan penetrasyonun konakçı penetrasyonunun birincil yolu olduğu sonucuna varmıştır (Benedict, 1971; Cohen ve Eyal, 1993; Hilu ve Bever, 1957). Kema ve arkadaşları (1996) sadece stoma penetrasyonu gözlemlemiştir. Stomalar boyunca büyüyen hifler yaklaşık 1 μm çapa kadar daralır, daha sonra substomatal boşluğa ulaştıktan sonra genişler.

Hifler epidermal hücrelerin altında yaprak yüzeyine paralel olarak büyür, daha sonra mezofilden alt epidermis hücrelerine doğru ilerler, ancak epidermisin içine girmez. Haustoria oluşmaz ve hifal büyüme, hiflerin çok yoğun olduğu durumlar dışında, damar demetleri etrafındaki sklerenkima hücreleri tarafından sınırlandırılır. Vasküler demetler istila edilmemiştir. Hifler mezofil boyunca hücre duvarları boyunca hücreler arası büyür, bir septumda veya bir hücrenin ortasında dallanır. Ara sıra görülen ölü hücreler dışında yaklaşık 9 gün boyunca makroskopik belirti görülmez, ancak mezofil hücreleri 11 gün sonra hızla ölür. Piknidyumlar substomatal odacıklarda gelişir. Hifler nadiren konukçu hücrelerin içine doğru büyür (Hilu ve Bever, 1957; Kema vd, 1996; Weber, 1922).

Başarılı enfeksiyon ancak en az 20 saatlik yüksek nemden sonra gerçekleşir. Yapraklar spor birikiminden sonra 5-10 saat (Holmes ve Colhoun, 1974) veya 24 saate kadar (Kema ve ark., 1996) ıslak kalırsa sadece birkaç kahverengi leke gelişmiştir. Konak-parazit ilişkileri dirençli veya duyarlı buğdaylarda aynıdır. Yaprak yüzeyindeki spor çimlenmesi duyarlılıktan bağımsız olarak aynıdır. Başarılı penetrasyon sayısı yaklaşık olarak aynıdır, ancak duyarlı çeşitlerde hifal büyüme daha hızlıdır ve bu da daha fazla lezyona neden olur. Hifler tüm çeşitlerde nekrotik alanın ötesine 44 2. Oturum - B.M. Cunfer uzanmaktadır. Bir toksin patogenezde rol oynayabilir (Cohen ve Eyal, 1993; Hilu ve Bever, 1957). Buna karşın, dirençli bir hatta kolonizasyon büyük ölçüde azalmıştır (Kema ve ark., 1996).

Tahıllarda Stagonospora (Septoria) ve Septoria Patojenleri: Enfeksiyon Süreci

B.M. Cunfer, Bitki Patolojisi Bölümü, Georgia Üniversitesi, Griffin, GA

Enfeksiyon süreci Stagonospora (Septoria) nodorum için en yoğun şekilde çalışılmıştır ve Septoria tritici. Üzerinde derinlemesine bir çalışma Septoria passerinii mevcuttur. Rapor edilen bilgilerin neredeyse tamamı pycnidiosporlar ile enfeksiyon içindir. Ancak, diğer spor formları için enfeksiyon süreci oldukça benzerdir. Sunulan bilgiler çoğunlukla optimum koşullar altında yaprakların enfeksiyonu içindir. Bazı çalışmalar sağlam fide bitkileri ile yapılırken, diğerleri koparılmış yapraklar ile gerçekleştirilmiştir. Buğday koleoptilinin ve fidesinin aşağıdakiler tarafından enfeksiyonu S. nodorum Baker (1971) tarafından ayrıntılı olarak tanımlanmış ve Cunfer (1983) tarafından gözden geçirilmiştir. Kesin karşılaştırmalar yapılmamış olmasına rağmen, enfeksiyon sürecinin her bir konakçı-parazit sisteminde birçok benzerliğe sahip olduğu ve birçok nekrotrofik patojen için tipik olduğu görülmektedir. Semptom gelişimi ve hastalık ifadesini etkileyen faktörler hakkındaki bilgiler hariç tutulmuştur ancak diğer yazarlar tarafından gözden geçirilmiştir (Eyal ve ark., 1987; King ve ark., 1983; Shipton ve ark., 1971). Yaprak yüzeyinde sporların uzun ömürlülüğünü etkileyen faktörlerin bir özeti yer almaktadır.

Cirrus'un Rolü ve Sporun Hayatta Kalması Yaprak Yüzeyinde Piknidyumdan salgılanan piknidiosporları saran sirrusun işlevi hakkında en ayrıntılı bilgi S. nodorum. Sirrus, protein ve sakkarit bileşiklerinden oluşan bir jeldir. Bileşimi ve işlevi Sphaeropsidales'teki diğer mantarlarınkine benzerdir (Fournet, 1969; Fournet vd., 1970; Griffiths ve Peverett, 1980). Sirrus bileşenlerinin birincil rolleri, piknidiosporların kurutulmaya karşı korunması ve erken çimlenmenin önlenmesidir.

Sirrus piknidiyosporları korur, böylece bazıları en az 28 gün canlı kalabilir (Fournet, 1969). Sirrus su ile seyreltildiğinde, sirrus çözeltisinin konsantrasyonu >20% ise, piknidiyosporların 10%'sinden daha azı çimlenmiştir. Daha düşük bir konsantrasyonda, bileşenler spor çimlenmesini ve germ tüplerinin uzamasını uyaran besinler sağlar. Çim tüpü uzunluğu 15% cirrus konsantrasyonuna kadar artmış, daha sonra daha yüksek konsantrasyonlarda orta derecede azalmıştır (Harrower, 1976). Brennan ve arkadaşları (1986) seyreltik sirrus sıvısında daha fazla çimlenme olduğunu bildirmiştir. Cirrus bileşenleri 10-60% bağıl nemde çimlenmeyi azaltmıştır. Sporlar dağıldıktan sonra, sirrus sıvısının uyarıcı etkileri muhtemelen ihmal edilebilir düzeydedir (Griffiths ve Peverett, 1980).

35-45% bağıl nemde, sporlar S. tritici cirri içinde en az 60 gün canlı kalmıştır (Gough ve Lee, 1985). Sirrus bileşenleri spor çimlenmesini engelleyici bir rol oynayabilir ya da sirrusun yüksek ozmotik potansiyeli çimlenmeyi önleyebilir. Piknidiyosporları S. nodorum Sporlar 20 C'de 80%'nin üzerindeki bağıl nemde 24 saat hayatta kalamamıştır. Sporlar <10% bağıl nemde iki hafta veya daha uzun süre hayatta kalmıştır (Griffiths ve Peverett, 1980). Sirrus sıvısı S. nodorum su ile seyreltildiğinde, piknidiosporların yaklaşık üçte ikisi 8 saat içinde canlılığını yitirmiş ve gün ışığında 30 saat sonra sadece 5% çimlenmiştir. Sporlar karanlıkta saklandığında, 40% 30 saat sonra canlı kalmıştır (Brennan ve ark., 1986).

Kuru konidya S. nodorumgölgede ve doğrudan güneş ışığında, açık havada en az 56 saat hayatta kalmıştır (Fernandes ve Hendrix, 1986a). S. nodorum piknidiosporlarının çimlenmesi sürekli UV-B (280-320 nm) ile engellenirken, S. nodorum pycnidiosporlarının çimlenmesi S. tritici değildi. Sürekli UV-B altında çim tüpü uzaması, karanlıkla karşılaştırıldığında her iki mantar için de engellenmiştir (Rasanayagam ve ark., 1995).

Septoria nodorum enfeksiyonu

Ev sahibi penetrasyon süreci ve S. nodorum Yaprak içindeki piknidiosporlar birçok araştırmacı tarafından ayrıntılı olarak incelenmiştir (Baker ve Smith, 1978, Bird ve Ride 1981, Karjalainen ve Lounatmaa, 1986; Keon ve Hargreaves, 1984; Straley, 1979; Weber, 1922). Piknidiosporlar iki epidermal hücre arasındaki çöküntülerde yerleşme eğilimindedir ve birçok yaprak penetrasyonu girişimi burada başlar. Sporlar serbest neme tepki olarak yaprak yüzeyinde çimlenir (Fernandes ve Hendrix, 1986b). Biriktirildikten 2-3 saat sonra çimlenmeye başlarlar ve 8 saat sonra çimlenme 90%'ye ulaşabilir. Yaprak penetrasyonu spor birikiminden yaklaşık 10 saat sonra başlar (Bird and Ride, 1981; Brönnimann et al., 1972; Holmes and Colhoun, 1974).

Çimlenmenin başlangıcında, germ tüpü yaprağa tutunan amorf bir madde ile çevrilidir. Bir sporun her iki ucundan ve interkalar hücrelerden büyüyen germ tüpleri, hücreler arasındaki çöküntüler boyunca büyüme eğilimindedir ve genellikle yaprağın uzun ekseni boyunca yönlendirilir (O'Reilly ve Downes, 1986). Çöküntülerde olmayan sporlardan gelen hifler ara sıra dallanarak rastgele büyür (Straley, 1979). Epidermal hücrelerin kütikülasını ve periklinal duvarlarını doğrudan hücre lümenine nüfuz eden ve hızlı hücre ölümüne neden olan bir enfeksiyon çivisi ile bir appressorium oluşur.

Birçok penetrasyon ilk olarak subkütikülerdir veya sitoplazmaya doğru büyümeden önce hücre duvarı içinde bir hifin yanal büyümesi gerçekleşir (Bird ve Ride, 1981; O'Reilly ve Downes, 1986). Hem açık hem de kapalı stomalardan penetrasyon da gerçekleşir ve doğrudan penetrasyondan daha hızlı olabilir (Harrower, 1976; Jenkins, 1978; O'Reilly ve Downes, 1986; Straley, 1979). Germ tüpleri stomalarda ve epidermal hücrelerin birleşme yerlerinde dallanır. Bir germ tüpünün bir stomaya penetrasyonu bir appressorium oluşmadan gerçekleşebilir. Penetrasyon bazen trikomlar aracılığıyla gerçekleşir (Straley, 1979). Görünüşe göre, penetrasyon girişimlerinin çoğu başarısız olur ve penetrasyon girişiminin olduğu bölgedeki hücrelerde yoğun papillalar oluşur (Karjalainen ve Lounatmaa, 1986; Bird ve Ride, 1981).

Penetrasyondan sonra epidermal hücreler hızla ölür ve odunlaşır ve hifler mezofil içine doğru büyür. Mezofil hücreleri şekilsizleşir ve odunlaşmış materyal bazı hücrelerin dışında birikir ve bunlar daha sonra çöker. Odunlaşma, hifler hücreye ulaşmadan önce gerçekleşir. Bu süreç tüm çeşitlerde aynıdır ancak dayanıklı çeşitlerde daha yavaş gelişir. Hifler epidermal hücreler arasında hücreler arası büyür, daha sonra mezofil içine girer. Mezofil nüfuz ettiğinde, kloroplast bozulması 6-9 gün içinde başlar (Karjalainen ve Lounatmaa, 1986).

Bununla birlikte, fotosentetik oran enfeksiyondan sonraki bir gün içinde ve semptomlar görülmeden önce düşmeye başlar (Krupinsky ve ark., 1973). Vasküler demetlerin etrafındaki sklerenkima dokusu vasküler dokunun enfeksiyonunu önler. Vasküler demetler, sklerenkima dokusunun genç olduğu ve tam olarak oluşmadığı durumlar dışında hiflerin mezofil boyunca yayılmasını engeller (Baker ve Smith, 1978).

Stagonospora nodorum, in vitro ortamda ve buğday yapraklarının enfeksiyonu sırasında amilaz, pektin metil esteraz, poligalakturonazlar, ksilanazlar ve selülaz dahil olmak üzere çok çeşitli hücre duvarı parçalayıcı enzimler salgılar (Baker, 1969; Lehtinen, 1993; Magro, 1984). Enzimler tarafından hücre duvarının parçalanması ile ilgili bilgiler histolojik gözlemlerle uyumludur ve bu enzimler toksinlerle birlikte hareket edebilir. Enzim duyarlılığı direnç ve mantar kolonizasyon oranı ile ilişkili olabilir (Magro, 1984). Birçok nekrotrof gibi Septoria ve Stagonospora patojenleri de in vitro fitotoksik bileşikler üretir. Mezofil dokusuna hifal büyümeden önce hücre bozulması ve ölümü (Bird ve Ride, 1981) toksin üretimi ile tutarlıdır. Bununla birlikte, enfeksiyon sürecinde toksinlerin kesin bir rolü ve konukçu direnci ile ilişkisi belirlenmemiştir (Bethenod ve diğerleri, 1982; Bousquet ve diğerleri, 1980; Essad ve Bousquet, 1981; King ve diğerleri, 1983). Buğday ve arpaya adapte olmuş suşlar arasındaki konakçı aralığı farklılıkları S. nodorum toksin üretimi ile ilişkili olabilir (Bousquet ve Kollmann, 1998). Spor çimlenmesinin başlaması ve çimlenen sporların yüzdesi konak duyarlılığından etkilenmez (Bird ve Ride, 1981; Morgan 1974; Straley, 1979; Straley ve Scharen, 1979; Baker ve Smith, 1978).
Bird ve Ride (1981), yaprak yüzeyindeki germ tüplerinin uzamasının dayanıklı çeşitlerde duyarlı çeşitlere göre daha yavaş olduğunu bildirmiştir. Spor birikiminden en az 48 saat sonra ifade edilen bu mekanizma, germ tüplerinin uzamasına karşı penetrasyon öncesi direnci gösterir. Dayanıklı çeşitlerde daha az başarılı penetrasyon olmuştur ve penetrasyon dayanıklı çeşitlerde daha yavaş ilerlemiştir (Baker ve Smith, 1978; Bird ve Ride, 1981). Odunlaşmanın hem dirençli hem de duyarlı çeşitlerde enfeksiyonu sınırladığı, ancak diğer faktörlerin dirençli hatlarda mantar gelişimini yavaşlattığı öne sürülmüştür. Duyarlı hatlarda, daha hızlı büyüyen hifler konakçı hücrelerin odunlaşmasından kaçabilir Arpanın buğday biyotipi izolatı ile inokülasyonundan dört gün sonra S. nodorumhifler kütikül boyunca ve bazen de epidermal hücre duvarlarının dış selüloz tabakalarında büyümüştür. Penetrasyon hiflerinin altında kalın papillalar birikmiş ve hücreler penetre olmamıştır (Keon ve Hargreaves, 1984).

Septoria passerinii enfeksiyonu: Green ve Dickson (1957), Türkiye'de bulunan bir türün enfeksiyon sürecinin ayrıntılı bir tanımını sunmaktadır. S. passerinii arpa üzerinde. Enfeksiyon süreci şuna benzer S. tritici. S. tritici'de olduğu gibi, yaprak penetrasyonu için gereken süre S. nodorum. Çim tüpleri dallanır ve yaprak yüzeyinde rastgele, ancak bazen epidermal hücreler arasındaki çöküntüler boyunca büyür. Yaprak penetrasyonu neredeyse sadece stomalar aracılığıyla gerçekleşir. Çimlenme hifleri şişer ve penetrasyon başarısız olursa hifler uzamaya devam eder. Spor birikiminden 48 saat sonra penetrasyon gerçekleşmez. 72 saat sonra, germ tüpleri stomalar üzerinde kalınlaşır, bekçi hücreleri arasında ve aksesuar hücrelerin yüzeylerinde ve substomatal boşluklara doğru büyür. Epidermal hücreler arasında doğrudan penetrasyon sadece nadiren görülür.
Spor çimlenmesi ve konukçu penetrasyonu dirençli ve duyarlı çeşitlerde aynıdır. Dirençli çeşitlerde hiflerin yapraklar içindeki uzanımı çok daha azdır ve papillalar tüm hücre duvarlarında olmasa da birçoğunda gözlenir. Hifler epidermisin altında bir stomadan diğerine doğru büyür, ancak epidermal hücreler arasına nüfuz etmez. Mezofil kolonize olur, ancak haustoria oluşmaz. Mezofil hücreleri nekrotik hale geldikten sonra epidermal hücreler çöker. Yapraktaki misel gelişimi seyrektir ve genellikle vasküler demetler tarafından engellenir. Genç yapraklarda, damar kılıfı daha az gelişmişse, hifler demet ve epidermis arasından geçer. Piknidyumlar substomatal boşluklarda, çoğunlukla üst yaprak yüzeyinde oluşur (Green ve Dickson, 1957).

Spor Uzun Ömürlülüğünü Etkileyen Faktörler Yaprak Yüzeyinde Tahılların Stagonospora ve Septoria patojenleri arasında, enfeksiyon sürecine ilişkin kesin bilgiler yalnızca S. nodorum, S. triticive S. passerinii. Diğer birçok nekrotrofik patojen gibi, her iki patojen grubu da aşırı duyarlı reaksiyonu ortaya çıkarır. Septoria ve Stagonospora patojenleri arasındaki enfeksiyon sürecindeki önemli bir fark, spor çimlenmesi ve penetrasyonunun Septoria ve Stagonospora patojenleri için çok daha hızlı ilerlemesidir. S. nodorum için olduğundan S. tritici ve S. passerinii. Bunun hastalık epidemiyolojisi üzerinde önemli bir etkisi vardır.
Septoria patojenleri bitkiye öncelikle stomalar aracılığıyla nüfuz ederken S. nodorum hem doğrudan hem de stomalar aracılığıyla nüfuz eder. S. nodorum epidermal hücrelere hızlı bir şekilde nüfuz eder ve öldürür, ancak S. tritici ve S. passerinii hifler yaprak mezofiline dallanana ve hızlı nekroz başlayana kadar epidermal hücreleri öldürmez. Konakçı penetrasyonunu takiben fungal büyümeye ilişkin histolojik çalışmalar, konakçı direncine ilişkin epidemiyolojik çalışmalardan elde edilen verilerle örtüşmektedir. Direnç, konak kolonizasyon hızını yavaşlatır ancak lezyon gelişim süreci üzerinde kayda değer bir etkisi yoktur.

Enfeksiyon sırasında patojenler tarafından salınan enzimler ve toksinler veya diğer metabolitlerle ilgili olsun, konak tepkisini kontrol eden mekanizmalar hala belirsizdir. Askosporlar tarafından enfeksiyon hakkında çok az bilgi vardır. Enfeksiyon süreci muhtemelen piknidiosporlar için olana çok benzerdir. Phaeosphaeria nodorum'un askosporları geniş bir sıcaklık aralığında çimlenir ve germ tüpleri doğrudan yaprağa nüfuz eder. Ancak, Rapilly ve arkadaşlarına (1973) göre, askosporlar, piknidiyosporların aksine, serbest suda çimlenmezler.

Septoria spp. Enfeksiyon Modeli

Septoria Enfeksiyonları düşük sıcaklıklarda mümkünken, 7°C'nin altındaki sıcaklıklar 2 gün içinde enfeksiyona yol açmayabilir. Hastalığın optimum sıcaklığına 16 ila 21°C'lik bir alanda ulaşılır. Enfeksiyonlar, 14 saat veya daha uzun süreli yüksek nispi nem veya yaprak ıslaklığı döneminde mümkündür. Koşulları karşılamak için zayıf, orta ve şiddetli enfeksiyonlar için modellere ayırmaya karar verdik. Patojenin konak dokuyu enfekte etmesi mümkünse zayıf enfeksiyonlar verilebilir. Bu, sıcaklıklar minimumda ve yaprak ıslaklık süreleri kritik süredeyse zayıf enfeksiyonların gerçekleşebileceği anlamına gelir. Orta dereceli bir enfeksiyon, çoğu enfeksiyon denemesinin makul sonuçlara yol açtığı koşullar altında gerçekleşecek ve şiddetli enfeksiyonlar, patojenin enfeksiyon için optimum koşullara sahip olduğu koşullar altında gerçekleşecektir.

Enfeksiyon başlar 0,5 mm'lik bir yağmurdan sonra. Piknidya oluşumu için bir model kullanmamaya karar verdik. Piknidya oluşumu için gerekli koşulun 85%'den daha yüksek bağıl nemliliğe sahip bir dönem olduğu varsayılmıştır. Piknidya yaşam süresinin 24 saat olması beklenmektedir. Septoria tritici'nin bulaşma şansının olduğu tüm iklimlerde, neredeyse her gün güneşin doğuşu sırasında 2 saatin bu koşulları yerine getirdiğini göreceğiz.

Enfeksiyon şiddeti değerlendirmesi: Septoria tritici enfeksiyon baskısını 10. aşama (ilk yaprak çukuru koleoptil) ile 32. aşama (1. düğümden en az 2 cm yukarıda ikinci düğüm) arasında ve 32 ile 51 (başaklanma başlangıcı) arasında değerlendirebilmek için enfeksiyonların şiddetini iklim koşullarına göre değerlendirmemiz gerekir. Bu değerlendirme 1'den 5'e kadar bir ölçekte yapılır. Zayıf bir enfeksiyon için gerekli koşullar yerine getirilmişse ve 5 mm'den daha az yağmur yağmışsa 1 şiddet derecesi verilir, aksi takdirde karşılık gelen şiddet derecesi 2 olacaktır. Orta şiddette bir enfeksiyon koşulu yerine getirilmişse ve 5 mm'den daha az yağmur yağmışsa 3 şiddet değeri verilir. Orta şiddette bir enfeksiyon sırasında 5 mm'den fazla veya şiddetli bir enfeksiyon sırasında 5 mm'den az yağmur yağmışsa 4 şiddet derecesi verilir.

Yağmurun 5 mm'den fazla olduğu şiddetli bir enfeksiyon 5 şiddet değerine karşılık gelir.

Septoria tritici hastalık basıncı değerlendirmesi: İklim, tarladaki hastalık baskısını belirleyen faktörlerden yalnızca biridir. Diğer iki faktör ise tarlanın geçmişi ve yetiştirilen çeşidin duyarlılığıdır. Eğer 10. evreden 32. evreye kadar olan hastalık şiddeti değerlerini 4 değerinde toplayabilirsek, iklim tarafından zayıf bir hastalık baskısı bekleyebiliriz. Bu değer 6'ya ulaşırsa orta derecede bir hastalık baskısı ve 10'a ulaşırsa iklimden yüksek bir hastalık baskısı bekleyebiliriz. Çeşidin duyarlılığını ve tarlanın geçmişini bilmek, bizi bu durumda zayıf veya orta dereceli bir hastalık baskısında ilaçlama yapmaya veya yapmamaya yönlendirecektir. Birikmiş değerin 10 olması, her halükarda 32. aşamada bir ilaçlamaya yol açabilir. Daha sonraki bir aşamada ilaçlama kararı daha çok ilkbahar iklimine bağlıdır. Eğer 10. aşamadan itibaren şiddet değerlerini 6 değerine kadar biriktirebilirsek, zayıf bir hastalık baskısı bekleyebiliriz. Bu değer 10'a ulaşırsa, orta derecede bir hastalık baskısı bekleyebiliriz ve bu değer 15'e ulaşırsa, iklim durumundan yüksek bir hastalık baskısı bekleyebiliriz.

FieldClimate'de şunları gösteriyoruz Septoria tritici Şiddet, üç farklı enfeksiyon şiddeti ile birlikte tek bir grafikte (yukarıya bakınız). Çok fazla yağış ve uzun yaprak ıslaklık süreleri nedeniyle şiddetli bir enfeksiyon için koşullar S. tritici 14 ve 16 Mayıs tarihlerinde tam saha olmuştur. Şiddet seviyeleri 14 Mayıs'ta en yüksek değer olan 5'e ulaşmıştır, bu da enfeksiyon için yüksek bir risk olduğu anlamına gelmektedir.

Stagonospora nodorum'un enfeksiyon biyolojisi S. tritici'ninkinden bir ölçüde farklıdır, ancak bu fark ayrı bir model için yeterince büyük değildir. Bu nedenle, bu modeli aşağıdakiler de dahil olmak üzere tahıllardaki tüm Stagnospora ve Septoria hastalıkları kompleksi için kullanmayı öneriyoruz S. passerinii. S. tritici ve S. passerinii daha uzun yaprak ıslaklık sürelerine ihtiyaç duyma eğilimindedir. S. nodorum. Yüksek basınçlı bölgelerde S. nodorum Zayıf olarak sınıflandırılan ve ciddiyet değeri 2 olan enfeksiyonlar diğer alanlara göre daha ciddi bir şekilde ele alınmalıdır.

İçin Septoria nodorum FieldClimate'de bir risk modeli gösterilmektedir (yukarıya bakınız). Yüksek risk 17 Haziran ve 7 Temmuz (100%) tarihlerinde tespit edilmiştir. Enfeksiyon için duyarlı bitki aşamasına bağlı olarak, risk 80%'ye ulaşırsa bitki koruma önlemleri dikkate alınmalıdır (ayrıca bkz. hava tahmini, koruyucu bitki koruma). Risk 100% ise ve bir enfeksiyon zaten tespit edilmişse, bitkiyi korumak için sistemik bitki koruma önlemleri (iyileştirici uygulama) alınmalıdır.