Există două boli majore de septorioză la grâu. Acestea sunt Septoria tritici blotch, provocată de ciuperca Septoria tritici (teleomorf: Mycophaerella graminicola) și Septoria nodorum pată, cauzată de ciuperca Septoria nodorum (teleomorfă: Leptosphaeria nodorum). Ambele boli cauzează pierderi serioase de randament care variază între 31 și 53% (Eyal, 1981; Babadoost și Herbert, 1984; Polley și Thomas, 1991). La nivel mondial, sunt afectate peste 50 de milioane de hectare de grâu, care cresc în principal în zonele cu precipitații abundente. În ultimii 25 de ani, aceste boli au fost în creștere și au devenit un factor limitativ major pentru producția de grâu în anumite zone. În cazul unor epidemii grave, miezul cultivarelor de grâu sensibile se zbârcește și nu este bun pentru măcinare. Epidemiile de Septoria tritici blotch și Septoria nodorum blotch la grâu sunt asociate cu condiții meteorologice favorabile (ploi frecvente și temperaturi moderate), practici culturale specifice, disponibilitatea inoculului și prezența unor soiuri de grâu sensibile (Eyal et al., 1987).

Septoria spp. Biologie

În urma lui Erick De Wolf, Septoria Tritici Blotch, Universitatea de Stat din Kansas, aprilie 2008 Septoria tritici cunoscută sub numele de "pată de frunze pătate", este cauzată de ciuperca Septoria tritici. Este răspândit în toate zonele de cultivare a grâului din lume și reprezintă o problemă gravă în multe regiuni. Septoria tritici este cel mai dăunătoare atunci când boala atacă frunzele superioare și căpățânile soiurilor sensibile la sfârșitul sezonului.

Simptomele

Septoria tritici Simptomele de pete apar pentru prima dată toamna. Simptomele inițiale sunt mici pete galbene pe frunze. Aceste leziuni devin adesea cafeniu deschis pe măsură ce îmbătrânesc, iar corpurile de fructificare ale ciupercii pot fi văzute încorporate în leziunile de pe coame. Leziunile au o formă neregulată și variază de la eliptică la lungă și îngustă (figura 1). Leziunile conțin pete mici, rotunde și negre, care reprezintă corpurile de fructificare ale ciupercii. Corpurile de fructificare negre arată ca niște boabe de piper negru și pot fi văzute, de obicei, fără ajutorul unei lupe. Boala începe pe frunzele inferioare și progresează treptat spre frunza steag. Tecile frunzelor sunt, de asemenea, susceptibile la atac. În anii umezi, ciuperca pătată a frunzelor se poate muta pe căpățâni și poate provoca leziuni brune pe glume și pe coame, cunoscute sub numele de pătarea glumelor. Aceste leziuni devin adesea cafeniu deschis pe măsură ce îmbătrânesc, iar corpurile de fructificare ale ciupercii sunt adesea vizibile încorporate în leziunile de pe coame.

Faza de pătare a glumei poate cauza pierderi semnificative de producție, dar relația dintre severitatea bolii și pierderea de producție nu este bine înțeleasă. Septoria tritici poate fi confundată cu alte boli ale frunzelor care au simptome foarte asemănătoare: pătarea bronzului și Stagonspora nodorum pată, de exemplu. Este obișnuit ca plantele să fie infectate de mai multe dintre aceste boli foliare și poate fi necesară o examinare de laborator pentru a diagnostica cu precizie care sunt cele mai răspândite boli. Examinarea de laborator este aproape întotdeauna necesară pentru a distinge cauza pătării glumei. Cunoașterea speciei nu este importantă pentru deciziile de pulverizare, deoarece toate cele trei boli răspund în mod similar la fungicide. Cu toate acestea, cunoașterea bolilor care sunt cele mai răspândite este o parte importantă a selecției soiurilor, deoarece diferite gene controlează rezistența la boli.
Cel mai sigur mod de a distinge petele de Septoria tritici de celelalte boli este prezența fructificațiilor negre ale ciupercii. Ciuperca care provoacă pătarea bronzată nu produce acest tip de structură reproductivă. Cu toate acestea, în condiții de umiditate, ciuperca care cauzează pata Stagonospora nodorum va produce corpuri fructifere de culoare maro deschis. În plus față de diferența de culoare, aceste structuri sunt, de asemenea, mai mici decât cele produse de Septoria tritici.

Ciclul de viață

Septoria tritici supraviețuiește pe parcursul verii pe reziduurile unei culturi anterioare de grâu și inițiază infecții în toamnă. Există unele dovezi că ciuperca poate supraviețui în asociere cu alte gazde ierboase și semințe de grâu. Aceste surse ale ciupercii sunt probabil cele mai importante atunci când nu există reziduuri de grâu. Indiferent de practicile de rotație sau de gestionare a reziduurilor, există, de obicei, suficient inocul pentru a iniția infecțiile de toamnă. Septoria tritici pătarea este favorizată de vremea rece și umedă. Intervalul optim de temperatură este cuprins între 16 și 21 °C; cu toate acestea, infecțiile pot apărea în timpul lunilor de iarnă la temperaturi de până la 5 °C. Infecția necesită cel puțin 6 ore de umezeală a frunzelor, iar pentru o infecție maximă sunt necesare până la 48 de ore de umezeală. Odată ce a avut loc infecția, ciuperca are nevoie de 21 până la 28 de zile pentru a dezvolta corpurile de fructificare negre caracteristice și pentru a produce o nouă generație de spori. Sporii produși în aceste corpuri de fructificare sunt exsudați în mase lipicioase și au nevoie de ploaie pentru a fi împrăștiați pe frunzele superioare și pe căpățâni.

Infecție prin Septoria tritici

Pycnidiospori de S. tritici germinează în apă liberă de la ambele capete ale sporului sau din celulele intercalare (Weber, 1922). Germinația sporilor nu începe decât după aproximativ 12 ore de la contactul cu frunza. Tuburile germinative se dezvoltă la întâmplare pe suprafața frunzei. Weber (1922) a observat doar penetrarea directă între celulele epidermice, dar alții au concluzionat că penetrarea prin stomatele deschise și închise este principalul mijloc de pătrundere în gazdă (Benedict, 1971; Cohen și Eyal, 1993; Hilu și Bever, 1957). Kema et al. (1996) au observat numai penetrarea prin stomate. Hifele care cresc prin stomate se restrâng până la un diametru de aproximativ 1 μm, apoi se lărgesc după ce ajung în cavitatea substomatală.

Hifele cresc paralel cu suprafața frunzei sub celulele epidermice, apoi prin mezofil până la celulele din partea inferioară a epidermei, dar nu în epidermă. Nu se formează haustorii, iar creșterea hifelor este limitată de celulele sclerenchymatice din jurul fasciculelor vasculare, cu excepția cazului în care hifele sunt foarte dense. Fasciculele vasculare nu sunt invadate. Hifele cresc intercelular de-a lungul pereților celulari prin mezofil, ramificându-se la un sept sau în mijlocul celulei. Nu apar simptome macroscopice timp de aproximativ 9 zile, cu excepția unei celule moarte ocazionale, dar celulele mezofile mor rapid după 11 zile. Picnidele se dezvoltă în camerele substomatice. Hifele rareori se dezvoltă în celulele gazdei (Hilu și Bever, 1957; Kema et al, 1996; Weber, 1922).

O infecție reușită are loc numai după cel puțin 20 de ore de umiditate ridicată. Doar câteva pete maronii s-au dezvoltat dacă frunzele au rămas umede timp de 5-10 ore după depunerea sporilor (Holmes și Colhoun, 1974) sau până la 24 de ore (Kema et al., 1996). Relațiile gazdă-parazit sunt aceleași pe grânele rezistente sau sensibile. Germinația sporilor pe suprafața frunzelor este aceeași, indiferent de sensibilitate. Numărul de penetrări reușite este aproximativ același, dar creșterea ifelor este mai rapidă la cultivarele sensibile, ceea ce duce la mai multe leziuni. Hifele se extind 44 Sesiunea 2 - B.M. Cunfer dincolo de zona necrotică la toate cultivarele. O toxină poate juca un rol în patogeneză (Cohen și Eyal, 1993; Hilu și Bever, 1957). În schimb, colonizarea a fost mult redusă pe o linie rezistentă (Kema et al., 1996).

Stagonospora (Septoria) și Septoria Pathogens of Cereals: Procesul de infectare

B.M. Cunfer, Departamentul de Fitopatologie, Universitatea din Georgia, Griffin, GA

Procesul de infectare a fost studiat cel mai intens pentru Stagonospora (Septoria) nodorum și Septoria tritici. Un studiu aprofundat privind Septoria passerinii este disponibil. Aproape toate informațiile raportate se referă la infecția prin picnidiospori. Cu toate acestea, procesul de infecție pentru alte forme de spori este destul de similar. Informațiile prezentate se referă în principal la infectarea frunzelor în condiții optime. Unele studii au fost realizate cu plante de răsaduri intacte, în timp ce altele au fost realizate cu frunze detașate. Infectarea coleoptilului și a răsadului de grâu de către S. nodorum a fost descrisă în detaliu de Baker (1971) și revizuită de Cunfer (1983). Deși nu s-au făcut comparații precise, se pare că procesul de infecție are multe asemănări în fiecare sistem gazdă-parazit și este tipic pentru mulți agenți patogeni necrotrofi. Informațiile privind factorii care influențează dezvoltarea simptomelor și expresia bolii sunt excluse, dar au fost analizate de alți autori (Eyal et al., 1987; King et al., 1983; Shipton et al., 1971). Este inclus un rezumat al factorilor care influențează longevitatea sporilor pe suprafața frunzelor.

Rolul Cirrusului și supraviețuirea sporilor pe suprafața frunzei Cele mai detaliate informații privind funcția de înveliș al cirrusului care încorporează picnidiosporii exsudați din picnidium sunt pentru S. nodorum. Cirrul este un gel compus din compuși proteici și zaharoizi. Compoziția și funcția sa sunt similare cu cele ale altor ciuperci din familia Sphaeropsidales (Fournet, 1969; Fournet et al., 1970; Griffiths și Peverett, 1980). Rolurile primare ale componentelor cirrului sunt protecția picnidiosporilor împotriva desecării și prevenirea germinării premature.

Cirrusul protejează picnidiosporii, astfel încât unii rămân viabili cel puțin 28 de zile (Fournet, 1969). Atunci când cirrusul a fost diluat cu apă, dacă concentrația soluției de cirrus era >20%, mai puțin de 10% de picnidiospori au germinat. La o concentrație mai mică, componentele furnizează nutrienți care stimulează germinarea sporilor și alungirea tuburilor germinative. Lungimea tuburilor germinative a crescut până la o concentrație de 15% cirrus, apoi a scăzut moderat la concentrații mai mari (Harrower, 1976). Brennan et al. (1986) au raportat o germinație mai mare în fluidul cirrus diluat. Componentele cirrusului au redus germinația la 10-60% umiditate relativă. Odată ce sporii sunt dispersați, efectele stimulatoare ale fluidului cirrus sunt probabil neglijabile (Griffiths și Peverett, 1980).

La o umiditate relativă de 35-45%, sporii de S. tritici în cirri au rămas viabile cel puțin 60 de zile (Gough și Lee, 1985). Componentele cirrilor pot acționa ca un inhibitor al germinării sporilor sau potențialul osmotic ridicat al cirrilor poate împiedica germinarea. Pycnidiosporii de S. nodorum nu au supraviețuit timp de 24 de ore la o umiditate relativă mai mare de 80% la 20 C. Sporii au supraviețuit două săptămâni sau mai mult la o umiditate relativă <10% (Griffiths și Peverett, 1980). Atunci când lichidul de cirrus al S. nodorum a fost diluat cu apă, aproximativ două treimi din picnidiospori și-au pierdut viabilitatea în 8 ore, iar după 30 de ore la lumina zilei, doar 5% au germinat. Atunci când sporii au fost depozitați la întuneric, 40% au rămas viabili după 30 de ore (Brennan et al., 1986).

Conidii uscate de S. nodorum, la umbră și în lumina directă a soarelui, au supraviețuit în aer liber cel puțin 56 de ore (Fernandes și Hendrix, 1986a). Germinația picnidiosporilor de S. nodorum a fost inhibată de UV-B continuu (280-320 nm), în timp ce germinația de S. tritici nu a fost. Extinderea tubului germinativ în condiții de UV-B continuu a fost inhibată pentru ambele ciuperci, în comparație cu întunericul (Rasanayagam et al., 1995).

Infecția cu Septoria nodorum

Procesul de penetrare a gazdei și de dezvoltare a S. nodorum în interiorul frunzei a fost examinată în detaliu de mai mulți cercetători (Baker și Smith, 1978, Bird și Ride 1981, Karjalainen și Lounatmaa, 1986; Keon și Hargreaves, 1984; Straley, 1979; Weber, 1922). Pycnidiosporii au tendința de a se depune în depresiunile dintre două celule epidermice, iar multe încercări de penetrare a frunzelor încep acolo. Sporii germinează pe suprafața frunzei ca răspuns la umiditatea liberă (Fernandes și Hendrix, 1986b). Aceștia încep să germineze la 2-3 ore de la depunere, iar după 8 ore germinația poate ajunge la 90%. Pătrunderea în frunze începe la aproximativ 10 ore după depunerea sporilor (Bird și Ride, 1981; Brönnimann et al., 1972; Holmes și Colhoun, 1974).

La începutul germinației, tubul germinativ este înconjurat de un material amorf care se atașează de frunză. Tuburile germinative care cresc de la ambele capete ale unui spor și din celulele intercalare tind să crească de-a lungul depresiunilor dintre celule și sunt adesea orientate de-a lungul axei lungi a frunzei (O'Reilly și Downes, 1986). Hifele din spori care nu se află în depresiuni cresc la întâmplare, cu ramificări ocazionale (Straley, 1979). Se formează un appressorium cu un vârf de infecție care penetrează cuticula și pereții periclinali ai celulelor epidermice direct în lumenul celular, ceea ce duce la moartea rapidă a celulelor.

Multe penetrări sunt mai întâi subcuticulare sau creșterea laterală a unei hifă are loc în interiorul peretelui celular înainte de creșterea în citoplasmă (Bird și Ride, 1981; O'Reilly și Downes, 1986). De asemenea, are loc o pătrundere prin stomate deschise și închise, care poate fi mai rapidă decât penetrarea directă (Harrower, 1976; Jenkins, 1978; O'Reilly și Downes, 1986; Straley, 1979). Tuburile germinative se ramifică la nivelul stomatelor și al joncțiunilor celulelor epidermice. Penetrarea unui tub germinativ într-un stomat poate avea loc fără formarea unui appressorium. Uneori, penetrarea are loc prin tricomi (Straley, 1979). Aparent, majoritatea încercărilor de penetrare eșuează, formându-se papile dense în celulele de la locul încercării de penetrare (Karjalainen și Lounatmaa, 1986; Bird și Ride, 1981).

După penetrare, celulele epidermice mor rapid și se lignifică, iar hifele cresc în mezofil. Celulele mezofile se deformează, iar materialul lignificat se depune în afara unor celule, care apoi se prăbușesc. Lignificarea are loc înainte ca hifele să ajungă în celulă. Procesul este același la toate soiurile, dar se dezvoltă mai lent la soiurile rezistente. Hifele se dezvoltă intercelular între celulele epidermice, apoi în mezofil. Când mezofilul este penetrat, deteriorarea cloroplastelor începe în 6-9 zile (Karjalainen și Lounatmaa, 1986).

Cu toate acestea, rata de fotosinteză începe să scadă în decurs de o zi după infecție și înainte ca simptomele să fie vizibile (Krupinsky et al., 1973). Țesutul de sclerenchyma din jurul fasciculelor vasculare previne infectarea țesutului vascular. Fasciculele vasculare blochează răspândirea hifelor prin mezofil, cu excepția cazului în care țesutul sclerenchyma este tânăr și nu este complet format (Baker și Smith, 1978).

Stagonospora nodorum eliberează o gamă largă de enzime de degradare a peretelui celular, inclusiv amilază, pectină metil esterază, poligalacturonaze, xilanaze și cellaze in vitro și în timpul infecției frunzelor de grâu (Baker, 1969; Lehtinen, 1993; Magro, 1984). Informațiile legate de degradarea peretelui celular de către enzime sunt în concordanță cu observațiile histologice. aceste enzime pot acționa în combinație cu toxinele. Sensibilitatea enzimatică poate fi legată de rezistență și de rata de colonizare fungică (Magro, 1984). La fel ca mulți necrotrofi, agenții patogeni Septoria și Stagonospora produc compuși fitotoxici in vitro. Deteriorarea ș i moartea celulelor înainte de dezvoltarea hifelor în țesutul mezofil (Bird ș i Ride, 1981) sunt în concordanță cu producția de toxine. Cu toate acestea, nu s-a stabilit un rol definitiv al toxinelor în procesul de infecție și nici relația lor cu rezistența gazdei (Bethenod et al, 1982; Bousquet et al, 1980; Essad și Bousquet, 1981; King et al, 1983). Diferențele în ceea ce privește gama de gazde între tulpinile adaptate la grâu și orz de S. nodorum poate fi legată de producția de toxine (Bousquet și Kollmann, 1998). Inițierea germinării sporilor și procentul de spori germinați nu sunt influențate de sensibilitatea gazdei (Bird și Ride, 1981; Morgan 1974; Straley, 1979; Straley și Scharen, 1979; Baker și Smith, 1978).
Bird și Ride (1981) au raportat că extinderea tuburilor germinative pe suprafața frunzelor a fost mai lentă la cultivarele rezistente decât la cele sensibile. Acest mecanism, exprimat la cel puțin 48 de ore de la depunerea sporilor, indică o rezistență la alungirea tuburilor germinative înainte de penetrare. Au fost mai puține penetrări reușite la cultivarele rezistente, iar penetrarea a decurs mai lent la cultivarele rezistente (Baker și Smith, 1978; Bird și Ride, 1981). S-a propus ca lignificarea să limiteze infecția atât la cultivarele rezistente, cât și la cele sensibile, dar alți factori au încetinit dezvoltarea ciupercii la liniile rezistente. La liniile sensibile, hifele cu creștere mai rapidă pot scăpa de lignificarea celulelor gazdă.La patru zile după inocularea orzului cu un izolat de biotip de grâu de S. nodorum, hifele au crescut prin cuticulă și, uneori, în straturile exterioare de celuloză ale pereților celulari epidermici. Sub hifele de penetrare s-au depus papile groase, iar celulele nu au fost penetrate (Keon și Hargreaves, 1984).

Infecția cu Septoria passerinii: Green și Dickson (1957) prezintă o descriere detaliată a procesului de infectare a S. passerinii pe orz. Procesul de infectare este similar cu S. tritici. Ca și în cazul lui S. tritici, durata de timp necesară pentru penetrarea frunzelor este considerabil mai mare decât pentru S. nodorum. Tuburile germinative se ramifică și cresc pe suprafața frunzei la întâmplare, dar uneori de-a lungul depresiunilor dintre celulele epidermice. Pătrunderea în frunze se face aproape exclusiv prin stomate. Hifele germinative se umflă, iar dacă penetrarea nu reușește, hifele continuă să se alungească. La 48 de ore de la depunerea sporilor, nu se mai produce nicio penetrare. După 72 de ore, tuburile germinative se îngroașă peste stomate, se dezvoltă între celulele de gardă și pe fețele celulelor de acces și în cavitățile substomatice. Pătrunderea directă între celulele epidermice este observată doar rareori.
Germinația sporilor și penetrarea în gazdă sunt identice la cultivarele rezistente și la cele sensibile. Există o extindere mult mai mică a hifelor în interiorul frunzelor la cultivarele rezistente, iar papilele sunt observate pe mulți, dar nu pe toți pereții celulari. Hifele se extind sub epidermă de la un stoma la altul, dar nu pătrund între celulele epidermice. Mezofilmul este colonizat, dar nu se formează haustorii. După ce celulele mezofile devin necrotice, celulele epidermice se prăbușesc. Dezvoltarea miceliului în frunză este rarefiată și, de obicei, blocată de fasciculele vasculare. La frunzele mai tinere, dacă teaca vasculară este mai puțin dezvoltată, hifele trec între fascicul și epidermă. Picnidele se formează în cavități substomatice, mai ales pe suprafața superioară a frunzei (Green și Dickson, 1957).

Factori care afectează longevitatea sporilor pe suprafața frunzelor Dintre agenții patogeni Stagonospora și Septoria de la cereale, informații definitive privind procesul de infecție au fost raportate doar pentru S. nodorum, S. tritici, și S. passerinii. La fel ca mulți alți agenți patogeni necrotrofi, niciunul dintre cei doi grupuri de agenți patogeni nu provoacă reacția de hipersensibilitate. O diferență semnificativă în procesul de infecție între agenții patogeni Septoria și Stagonospora este că germinarea și penetrarea sporilor se desfășoară mult mai rapid în cazul S. nodorum decât pentru S. tritici și S. passerinii. Acest lucru are o influență semnificativă asupra epidemiologiei bolilor.
Agenții patogeni Septoria pătrund în plantă în primul rând prin stomate, în timp ce S. nodorum pătrunde atât direct, cât și prin stomate. S. nodorum penetrează și ucide rapid celulele epidermice, dar S. tritici și S. passerinii nu ucid celulele epidermice până când hifele nu se ramifică prin mezofilul frunzei și începe necroza rapidă. Studiile histologice privind creșterea fungică în urma pătrunderii în gazdă corespund datelor generate de studiile epidemiologice privind rezistența gazdei. Rezistența încetinește rata de colonizare a gazdei, dar nu are un efect apreciabil asupra procesului de dezvoltare a leziunilor.

Mecanismele care controlează răspunsul gazdei, fie că sunt legate de enzime și toxine sau de alți metaboliți eliberați de agenții patogeni în timpul infecției, sunt încă neclare. Există puține informații despre infecția prin ascospori. Procesul de infectare este probabil foarte asemănător cu cel al picnidiosporilor. Ascosporii de Phaeosphaeria nodorum germinează într-o gamă largă de temperaturi, iar tuburile lor germinative pătrund direct în frunze. Cu toate acestea, conform Rapilly et al. (1973), ascosporii, spre deosebire de picnidiospori, nu germinează în apă liberă.

Model de infecție cu Septoria spp.

Infecțiile cu septorioză sunt posibile la temperaturi scăzute, în timp ce temperaturile sub 7°C pot să nu ducă la infecții în decurs de 2 zile. Temperatura optimă a bolii este atinsă în zona de 16-21°C. Infecțiile sunt posibile într-o perioadă de umiditate relativă ridicată sau de umezeală a frunzelor de 14 ore sau mai mult. Pentru a îndeplini aceste condiții, am decis să separăm modelele pentru infecții slabe, moderate și severe. Infecțiile slabe pot fi date în cazul în care este posibil ca agentul patogen să infecteze țesutul gazdei. Acest lucru înseamnă că infecțiile slabe pot avea loc dacă temperaturile sunt minime, iar perioadele de umezeală a frunzelor au o durată critică. O infecție moderată va avea loc în condițiile în care majoritatea testelor de infecție conduc la rezultate rezonabile, iar infecțiile severe au loc în condițiile în care agentul patogen are condiții optime de infectare.

Începe infecția după o ploaie de 0,5 mm. Am decis să nu folosim un model pentru formarea picnidiei. Condiția necesară pentru formarea picnidiei este presupusă a fi o perioadă cu o umiditate relativă mai mare de 85%. Se estimează că durata de viață a picnidiei este de 24 de ore. În toate climatele în care Septoria tritici are șansa de a se infecta, vom găsi 2 ore care îndeplinesc aceste condiții aproape în fiecare zi în jurul răsăritului soarelui.

Evaluarea severității infecției: Pentru a putea evalua presiunea de infecție cu Septoria tritici între stadiul 10 (prima frunză de pe coleoptil) și stadiul 32 (nodul doi la cel puțin 2 cm deasupra nodului 1) și între 32 și 51 (începutul epilării), trebuie să evaluăm severitatea infecțiilor în funcție de condițiile climatice. Această evaluare se face pe o scară de la 1 la 5. Gradul de gravitate 1 este dat dacă sunt îndeplinite condițiile pentru o infecție slabă și a plouat mai puțin de 5 mm, în caz contrar, gradul de gravitate corespunzător va fi 2. Se acordă un grad de severitate 3 dacă este îndeplinită o infecție moderată și a plouat mai puțin de 5 mm. Dacă a plouat mai mult de 5 mm în timpul unei infecții moderate sau mai puțin de 5 mm în timpul unei infecții severe, se acordă un grad de gravitate 4.

O infecție severă, cu mai mult de 5 mm de ploaie, corespunde unei valori de gravitate de 5.

Septoria tritici evaluarea presiunii bolii: Clima este doar unul dintre factorii care influențează presiunea bolilor în câmp. Ceilalți doi factori sunt istoricul câmpului și susceptibilitatea soiului cultivat. Dacă putem acumula valorile severității bolii din stadiul 10 până în stadiul 32 la valoarea 4, ne putem aștepta la o presiune slabă a bolii din cauza climei. Dacă această valoare ajunge la 6, ne putem aștepta la o presiune moderată a bolii, iar dacă ajunge la 10, ne putem aștepta la o presiune ridicată a bolii din partea climei. Cunoașterea sensibilității soiului și a istoricului câmpului ne va determina să pulverizăm sau nu la o presiune slabă sau moderată a bolii în această situație. Dacă valoarea acumulată este de 10, poate duce oricum la o pulverizare în stadiul 32. Decizia de a face o pulverizare într-un stadiu ulterior depinde mai mult de climatul de primăvară. Dacă reușim să acumulăm valorile de severitate din stadiul 10 până la o valoare de 6, ne putem aștepta la o presiune slabă a bolii. Dacă această valoare ajunge la 10, ne putem aștepta la o presiune moderată a bolii, iar dacă această valoare ajunge la 15, ne putem aștepta la o presiune ridicată a bolii, în funcție de situația climatică.

În FieldClimate arătăm Septoria tritici Severitatea împreună cu cele trei grade de infecție diferite într-un singur grafic (a se vedea mai sus). Din cauza precipitațiilor și a perioadelor lungi de umezeală a frunzelor, condițiile pentru o infecție severă cu S. tritici au fost fullfield pe 14 și 16 mai. Nivelurile de gravitate ating cea mai mare valoare de 5 pe 14 mai, ceea ce înseamnă că există acum un risc ridicat de infectare.

Biologia infecției Stagonospora nodorum diferă într-o oarecare măsură de cea a S. tritici, dar această diferență nu este suficient de mare pentru un model separat. Prin urmare, sugerăm să se utilizeze acest model pentru întregul complex de boli ale Stagnospora și Septoria la cereale, inclusiv S. passerinii. S. tritici și S. passerinii au tendința de a avea nevoie de perioade mai lungi de umezire a frunzelor decât S. nodorum. În zonele cu o presiune ridicată de S. nodorum infecțiile clasificate ca fiind slabe, cu o valoare de gravitate 2, trebuie tratate mai serios decât în alte domenii.

Pentru Septoria nodorum un model de risc este prezentat în FieldClimate (a se vedea mai sus). Un risc ridicat a fost determinat la 17 iunie și 7 iulie (100%). În funcție de stadiul plantelor sensibile la infecție, trebuie luate în considerare măsurile de protecție a plantelor dacă riscul ajunge la 80% (a se vedea, de asemenea, prognoza meteo, protecția plantelor). În cazul în care riscul a fost de 100% și s-a constatat deja o infecție, trebuie luate măsuri de protecție sistemică a plantelor (aplicare curativă) pentru a proteja planta.