Oïdium est une maladie courante des cucurbitacées en plein champ et en serre dans la plupart des régions du monde. Bien que toutes les cucurbitacées soient sensibles, les symptômes sont moins fréquents sur le concombre et le melon car de nombreux cultivars commerciaux sont résistants. Cette maladie peut constituer un problème de production majeur. La quantité de rendement est réduite en raison d'une diminution de la taille ou du nombre de fruits ou d'une diminution de la durée de la période de récolte. La sénescence prématurée des feuilles infectées peut entraîner une baisse de la qualité du marché, car les fruits sont brûlés par le soleil ou mûrissent prématurément ou incomplètement. Ces fruits se conservent mal (courge d'hiver), ont peu de solides solubles et donc peu de goût (melon), ont une écorce de mauvaise couleur (citrouille) et des poignées ratatinées et décolorées (citrouille). Le stress causé par la maladie peut entraîner des imperfections sur l'écorce du fruit, telles que des mouchetures, des indentations en relief et des œdèmes. En outre, l'infection par l'oïdium prédispose les plantes à d'autres maladies, en particulier la brûlure gommeuse de la tige.

Podosphaera xanthii (précédemment connu sous le nom de Sphaerotheca fuliginea et S. fusca) et Erysiphe cichoracearum sont les deux champignons les plus fréquemment observés à l'origine de l'oïdium des cucurbitacées. E. cichoracearum était considéré comme le principal organisme responsable dans la majeure partie du monde avant 1958. Aujourd'hui, P. xanthii est plus répandu dans le monde entier. Il est possible que la prédominance de ces deux champignons ait changé ou que l'organisme responsable ait été mal identifié. P. xanthii est un pathogène plus agressif que le E. cichoracearum. E. cichoracearum peut avoir un optimum de température plus bas car cette espèce se trouve principalement pendant les périodes plus fraîches du printemps et du début de l'été, et P. xanthii semble progresser le plus rapidement pendant les mois les plus chauds. Les conidies (spores produites de manière asexuée) du E. cichoracearum et P. xanthii sont difficiles à distinguer et les cleistothécies, qui sont des fructifications sexuelles (structures contenant des spores produites par reproduction sexuelle), ont été observées plus rarement. Par conséquent, ces champignons ont été confondus. Le nom du champignon a souvent été rapporté sans confirmation valable. Les critères de différenciation de ces champignons à partir du stade conidien n'ont été identifiés que dans les années 1960. Le principal critère utilisé est la présence de corps de fibrosine dans les conidies de P. xanthii. Sur la base de ces critères, P. xanthii s'est avéré être le champignon prédominant, plutôt que le E. cichoracearum comme cela a été affirmé précédemment, dans plusieurs pays. Lors d'enquêtes récentes E. cichoracearum a été trouvée rarement et seulement au début du développement de la maladie à New York et dans d'autres États de l'Est.

Symptômes et signes

Une croissance fongique blanche et poudreuse se développe sur les surfaces des feuilles, les pétioles et les tiges. Elle se développe généralement en premier sur les feuilles de la couronne, sur les feuilles inférieures ombragées et sur les surfaces inférieures des feuilles. Des taches jaunes peuvent se former sur la face supérieure des feuilles, à l'opposé des colonies d'oïdium. Les plantes plus âgées sont touchées en premier. Les feuilles infectées se flétrissent et meurent généralement. Les plantes peuvent devenir sénescentes prématurément. L'infection des fruits se produit rarement sur la pastèque et le concombre. Cleistothecia sont des structures brun foncé, de petite taille (diamètre d'environ 0,003 pouce), à peine discernables à l'aide d'une loupe. Elles se développent à la fin de la saison de croissance. Les spores sexuelles à l'intérieur de ces structures sont protégées des conditions défavorables.

Cycle de la maladie

On pense que le principal inoculum initial est constitué par les conidies en suspension dans l'air, dispersées sur de longues distances à partir des endroits où les cucurbitacées sont cultivées plus tôt dans l'année. Les conidies restent viables pendant 7-8 jours sur la base des résultats d'études en laboratoire. Les champignons responsables sont des parasites obligatoires et ne peuvent donc pas survivre en l'absence de plantes hôtes vivantes, sauf sous forme de cléistothèces. Les sources locales possibles d'inoculum initial comprennent les conidies provenant de cucurbitacées cultivées en serre, les cleistothèces et les hôtes alternatifs. Les cleistothèces ont été rarement signalés aux Etats-Unis ; cependant, même lorsqu'ils sont présents, ils peuvent être négligés. Les deux types d'accouplement nécessaires à la reproduction sexuelle ont été trouvés dans l'ensemble des Etats-Unis, y compris à New York. Bien que P. xanthii et E. cichoracearum sont décrits comme ayant une large gamme d'hôtes, il a été démontré que les souches de ces champignons sont spécifiques à l'hôte. Le rôle des hôtes autres que les cucurbitacées en tant que sources d'inoculum n'a pas été étudié. La verveine, une plante ornementale commune, pourrait être une source importante d'inoculum, en particulier pour les cucurbitacées cultivées ou transplantées dans la même serre que la verveine.

L'oïdium se développe rapidement sous conditions favorables car la longueur de Le délai entre l'infection et l'apparition des symptômes n'est généralement que de 3 à 7 jours et un grand nombre de conidies peuvent être produites en peu de temps. Les conditions favorables sont les suivantes une croissance dense des plantes et faible intensité lumineuse. Humidité relative élevée est favorable à l'infection et à la survie des conidies, L'infection peut se produire à partir de 50% RH. La sécheresse est favorable à la colonisation, à la sporulation et à la dispersion. La pluie et l'humidité libre à la surface des plantes sont défavorables. Cependant, la maladie se développe en présence ou en l'absence de rosée. Une température moyenne de 68-80°F (20°C-27°C) est favorable ; l'infection peut se produire à 50-90°F !0°C-32°C) . Le développement de l'oïdium est arrêté lorsque les températures diurnes atteignent au moins 28°C. Les plantes en plein champ ne sont souvent affectées qu'après l'initiation des fruits. La sensibilité des feuilles est maximale 16 à 23 jours après le déploiement.

Contrôles culturels et biologiques

La résistance génétique est largement utilisée dans le concombre et le melon, et a été incorporée dans la plupart des autres cultures de cucurbitacées. La plupart des variétés de courges et de citrouilles résistantes aux États-Unis contiennent une ou deux copies du même gène majeur de résistance provenant d'une cucurbitacée sauvage. La génétique de la résistance est différente chez le concombre et le melon. Récemment, une diminution du degré de suppression réalisable avec des variétés résistantes a été détectée, indiquant une adaptation de Podosphaera xanthii. Les plantations successives de cucurbitacées doivent être physiquement séparées ou au moins plantées en amont des plantations plus anciennes, car ces dernières peuvent servir de source de conidies. Des fongicides contenant des champignons antagonistes pour la lutte biologique ont été développés.

Contrôle chimique

Les fongicides doivent être appliqués après avoir été détectés par les DDS. Inspecter les plantes chaque semaine à partir de juillet et après l'initiation des fruits (lorsque les plantes deviennent plus sensibles). Examiner les surfaces supérieures et inférieures de cinq feuilles plus âgées sur chacun des dix sites ou jusqu'à ce que des symptômes soient détectés. Lancer un programme de pulvérisation dès l'apparition des symptômes. Une plantation printanière de courges d'été sera infectée en premier ; par conséquent, lorsqu'elle est disponible, elle peut être utilisée comme indicateur du moment où il faut commencer à dépister les cultures de vignes et les plantations ultérieures de courges d'été.

Dans le cadre d'un programme préventif, les applications doivent commencer lorsque les plantes commencent à courir et/ou à produire des fruits et que les conditions d'infection sont favorables. Pour obtenir un contrôle adéquat, il faut appliquer un fongicide sur la face inférieure des feuilles et sur les feuilles situées au bas de la canopée, car c'est sur ces surfaces que le champignon se développe le mieux. Le meilleur moyen d'y parvenir est d'utiliser des produits mobiles (quinoxyfen, boscalid, triflumizole). Une autre approche consiste à améliorer l'efficacité des produits de contact (chlorothalonil, cuivre) en maximisant la couverture de la pulvérisation sur les surfaces inférieures des feuilles. Les pulvérisateurs pneumatiques sont l'un des moyens les plus efficaces pour augmenter la couverture et les dépôts sur toutes les surfaces des feuilles. La couverture produite par les pulvérisateurs à rampe hydraulique traditionnels peut être augmentée en réduisant l'espacement des buses (10 pouces est mieux que 20 pouces), en augmentant le volume (75 gpa a bien fonctionné), en augmentant la pression (au moins 80 psi), ou en changeant pour des buses plus petites qui dirigent les pulvérisations à un angle vers la canopée. Utiliser du papier sensible à l'eau pour vérifier la couverture de la pulvérisation. Se référer à la norme Cornell Pest Management Guidelines for Commercial Vegetable Production (Lignes directrices de Cornell pour la lutte contre les ravageurs dans la production commerciale de légumes) pour obtenir une liste actualisée des fongicides disponibles et suivre les instructions figurant sur l'étiquette.

Le développement de la résistance aux fongicides et l'échec de la lutte qui en découle sont toujours une préoccupation avec les fongicides mobiles en raison de leur mode d'action sur un seul site. Des souches du champignon de l'oïdium résistantes (insensibles) à ces fongicides ont été découvertes dans l'ensemble des États-Unis. Une sensibilité réduite aux fongicides de plusieurs groupes chimiques a également été détectée dans d'autres régions du monde. Par conséquent, il faut toujours utiliser des tactiques pour minimiser le risque de sélection de souches pathogènes résistantes : appliquer des fongicides mobiles avec des fongicides de contact, ne les appliquer que lorsque cela est le plus nécessaire pour protéger le rendement (ce qui est généralement le cas au début du développement de la maladie), utiliser les doses les plus élevées indiquées sur l'étiquette et alterner entre des fongicides mobiles ayant des modes d'action différents, comme indiqué par leur code FRAC, lorsque cela est possible (le triflumizole et le myclobutanil ont le même mode d'action ; ils font partie du groupe FRAC 3). En outre, il convient de maximiser la couverture de pulvérisation et d'utiliser également des pratiques de lutte non chimique. Au début des épidémies d'oïdium, la fréquence des souches résistantes aux fongicides mobiles est généralement suffisamment faible pour qu'au moins une application de ces fongicides ait permis de supprimer l'oïdium. Cette situation pourrait changer à l'avenir. La fréquence des souches résistantes peut augmenter rapidement après le traitement.

Plusieurs biopesticides approuvés pour la production biologique sont homologués pour cette maladie aux États-Unis. Ces produits contiennent des ingrédients naturels tels que des huiles végétales, des bicarbonates, du dioxyde d'hydrogène et des lipopeptides. Il s'agit de produits de contact, et une bonne couverture est donc essentielle pour une lutte efficace. Les produits évalués dans le cadre d'essais universitaires ont fait preuve d'une efficacité variable, certains étant aussi efficaces que les fongicides de contact conventionnels.

Source : LégumesMDonLine

Dans le FieldClimate, le risque d'oïdium est détecté par les capteurs : humidité de la feuille et température. Les conditions pour un développement optimal du champignon pathogène sont les suivantes :

• La pluie et l'humidité libre à la surface des plantes sont défavorables.
• Une température moyenne de 68-80°F (20°C-27°C) est favorable ; l'infection peut se produire à 50-90°F !0°C-32°C). Le développement de l'oïdium est stoppé lorsque les températures diurnes atteignent au moins 28°C.
• La sensibilité des feuilles est maximale 16 à 23 jours après le déploiement.

Les conditions du 20 juillet et du début du mois d'août ont été favorables au champignon pathogène. Pendant ces périodes, la température était comprise entre 20°C et 27°C et le temps était assez sec (pas de période d'humidité des feuilles).