Echter Mehltau ist in den meisten Regionen der Welt eine häufige Krankheit von Gurken unter Feld- und Gewächshausbedingungen. Obwohl alle Gurkenarten anfällig sind, treten die Symptome bei Gurken und Melonen seltener auf, da viele kommerzielle Sorten resistent sind. Diese Krankheit kann ein großes Produktionsproblem darstellen. Die Ertragsmenge wird durch eine Abnahme der Größe oder Anzahl der Früchte oder eine Verkürzung der Erntezeit verringert. Ein vorzeitiges Altern der infizierten Blätter kann zu einer verminderten Marktqualität führen, weil die Früchte Sonnenbrand bekommen oder vorzeitig oder unvollständig reifen. Solche Früchte sind schlecht lagerfähig (Winterkürbis), haben einen geringen Gehalt an löslichen Feststoffen und damit einen schlechten Geschmack (Melone), eine schlechte Schalenfarbe (Kürbis) und schrumpelige, verfärbte Stiele (Kürbis). Krankheitsbedingter Stress kann zu Unregelmäßigkeiten auf der Fruchtschale führen, wie z. B. Flecken, erhöhte Vertiefungen und Ödeme. Darüber hinaus prädisponiert eine Mehltauinfektion die Pflanzen für andere Krankheiten, insbesondere für die Stängelfäule.

Podosphaera xanthii (früher bekannt als Sphaerotheca fuliginea und S. fusca) und Erysiphe cichoracearum sind die beiden am häufigsten nachgewiesenen Pilze, die den Echten Mehltau bei Kürbissen verursachen. E. cichoracearum wurde vor 1958 in den meisten Teilen der Welt als der primäre Erreger angesehen. Heute, P. xanthii ist weltweit häufiger anzutreffen. Möglicherweise ist es zu einer Verschiebung der Dominanz dieser beiden Pilze gekommen oder der verursachende Organismus wurde falsch identifiziert. P. xanthii ist ein aggressiverer Erreger als E. cichoracearum. E. cichoracearum kann ein niedrigeres Temperaturoptimum haben, da diese Art hauptsächlich in den kühleren Frühjahrs- und Frühsommermonaten vorkommt und P. xanthii scheint sich in den wärmeren Monaten am schnellsten zu entwickeln. Die Konidien (ungeschlechtlich produzierte Sporen) von E. cichoracearum und P. xanthii sind schwer zu unterscheiden, und Cleistothecien, sexuelle Fruchtkörper (Strukturen mit Sporen, die durch sexuelle Fortpflanzung entstehen), wurden seltener beobachtet. Infolgedessen sind diese Pilze verwechselt worden. Der Name des Pilzes wurde häufig ohne gültige Bestätigung angegeben. Kriterien zur Unterscheidung dieser Pilze anhand des Konidienstadiums wurden erst in den 1960er Jahren festgelegt. Das Hauptkriterium ist das Vorhandensein von Fibrosinkörpern in den Konidien von P. xanthii. Auf der Grundlage dieser Kriterien, P. xanthii war der vorherrschende Pilz, und nicht E. cichoracearum wie zuvor behauptet, in mehreren Ländern. Bei den jüngsten Erhebungen E. cichoracearum wurde selten und nur zu Beginn der Krankheitsentwicklung in New York und anderen östlichen Bundesstaaten gefunden.

Symptome und Anzeichen

Weißer, pulverförmiger Pilzbefall entwickelt sich sowohl auf den Blattoberflächen als auch auf den Blattstielen und Stängeln. Er entwickelt sich in der Regel zuerst auf Kronenblättern, auf schattigen unteren Blättern und auf Blattunterseiten. Auf den Blattoberseiten gegenüber den Mehltaukolonien können sich gelbe Flecken bilden. Ältere Pflanzen werden zuerst befallen. Befallene Blätter welken in der Regel und sterben ab. Die Pflanzen können vorzeitig absterben. Fruchtinfektionen treten bei Wassermelone und Gurke selten auf. Cleistothecia sind dunkelbraune, kleine (Durchmesser von etwa 0,003 Zoll) Strukturen, die ohne Handlinse kaum zu erkennen sind. Sie entwickeln sich spät in der Vegetationsperiode. Die Sexualsporen in diesen Strukturen sind vor ungünstigen Bedingungen geschützt.

Krankheitszyklus

Man geht davon aus, dass das primäre Ausgangsinokulum aus der Luft stammende Konidien sind, die über große Entfernungen von Orten verbreitet werden, an denen früher im Jahr Kürbiskulturen angebaut werden. Konidien bleiben 7-8 Tage lang lebensfähig auf der Grundlage von Ergebnissen aus Laborstudien. Die verursachenden Pilze sind obligate Parasiten und können daher in Abwesenheit von lebenden Wirtspflanzen nicht überleben, es sei denn als Cleistothecien. Mögliche lokale Quellen für das anfängliche Inokulum sind Konidien von im Gewächshaus gezüchteten Kürbisgewächsen, Cleistothecien und Zwischenwirte. Cleistothecien wurden in den Vereinigten Staaten nur selten gemeldet, doch selbst wenn sie vorhanden sind, können sie übersehen werden. Beide Paarungstypen, die für die sexuelle Vermehrung erforderlich sind, wurden in den gesamten Vereinigten Staaten, einschließlich New York, gefunden. Obwohl P. xanthii und E. cichoracearum mit einem breiten Wirtsspektrum beschrieben werden, haben sich Stämme dieser Pilze als wirtsspezifisch erwiesen. Die Rolle von Wirten, die nicht zu den Kürbisgewächsen gehören, als Inokulumquelle wurde nicht untersucht. Eisenkraut, eine weit verbreitete Zierpflanze, könnte eine wichtige Quelle für Inokulum sein, insbesondere für Kürbisgewächse, die im selben Gewächshaus wie Eisenkraut angebaut oder verpflanzt werden.

Echter Mehltau entwickelt sich schnell unter günstige Bedingungen weil die Länge der Die Zeit zwischen der Infektion und dem Auftreten von Symptomen beträgt in der Regel nur 3 bis 7 Tage, und es kann in kurzer Zeit eine große Anzahl von Konidien produziert werden. Günstige Bedingungen sind dichter Pflanzenwuchs und geringe Lichtintensität. Hohe relative Luftfeuchtigkeit ist jedoch günstig für die Infektion und das Überleben der Konidien, Die Infektion kann bis zu 50% RH erfolgen. Trockenheit begünstigt die Besiedlung, Sporenbildung und Ausbreitung. Regen und freie Feuchtigkeit auf der Pflanzenoberfläche sind ungünstig. Die Krankheit entwickelt sich jedoch unabhängig davon, ob Tau vorhanden ist oder nicht. Eine mittlere Temperatur von 68-80°F (20°C-27°C) ist günstig; eine Infektion kann bei 50-90°F !0°C-32°C) auftreten. Die Entwicklung des Echten Mehltaus wird gestoppt, wenn die Tagestemperaturen mindestens 28°C (100°F) betragen. Auf dem Feld werden die Pflanzen oft erst nach dem Fruchtansatz befallen. Die Anfälligkeit der Blätter ist 16 bis 23 Tage nach der Entfaltung am größten.

Kulturelle und biologische Kontrollen

Genetische Resistenz wird in großem Umfang bei Gurken und Melonen eingesetzt und wurde auch in die meisten anderen Gurkenkulturen integriert. Die meisten resistenten Kürbis- und Squashsorten in den Vereinigten Staaten enthalten eine oder zwei Kopien desselben Hauptresistenzgens aus einer Wildgurke. Die Genetik der Resistenz ist bei Gurken und Melonen unterschiedlich. Kürzlich wurde ein Rückgang des mit resistenten Sorten erreichbaren Unterdrückungsgrades festgestellt, was auf eine Anpassung von Podosphaera xanthii hindeutet. Aufeinanderfolgende Gurkenpflanzungen sollten räumlich getrennt oder zumindest im Windschatten älterer Pflanzungen gepflanzt werden, da ältere Pflanzen als Konidienquelle dienen können. Es wurden Fungizide entwickelt, die antagonistische Pilze zur biologischen Bekämpfung enthalten.

Chemische Kontrolle

Fungizide sollten nach dem Nachweis durch das DDS angewendet werden. Die Pflanzen sind ab Juli und nach dem Fruchtansatz (wenn die Pflanzen anfälliger werden) wöchentlich zu untersuchen. Untersuchen Sie die Ober- und Unterseiten von fünf älteren Blättern an jedem von 10 Standorten oder bis Symptome gefunden werden. Starten Sie ein Spritzprogramm, wenn Symptome festgestellt werden. Eine Frühjahrspflanzung von Sommerkürbis wird zuerst infiziert; daher kann sie, sofern verfügbar, als Indikator dafür dienen, wann mit der Untersuchung von Rebkulturen und späteren Sommerkürbisanpflanzungen begonnen werden sollte.

Bei einer vorbeugenden Behandlung sollte mit der Anwendung begonnen werden, wenn die Pflanzen zu treiben beginnen und/oder Früchte tragen und die Bedingungen für Infektionen günstig sind. Um eine angemessene Bekämpfung zu erreichen, ist ein Fungizid auf der Unterseite der Blätter und auf Blättern im unteren Bereich des Pflanzendaches erforderlich, da sich der Pilz auf diesen Oberflächen am besten entwickelt. Dies lässt sich am besten durch den Einsatz mobiler Stoffe (z. B. Quinoxyfen, Boscalid, Triflumizol) erreichen. Ein anderer Ansatz besteht darin, die Wirksamkeit von Kontaktmitteln (z. B. Chlorthalonil, Kupfer) zu verbessern, indem die Sprühabdeckung auf den Unterseiten der Blätter maximiert wird. Luftunterstützte Sprühgeräte sind eines der wirksamsten Mittel zur Erhöhung der Abdeckung und der Ablagerungen auf allen Blattoberflächen. Die mit herkömmlichen hydraulischen Auslegerspritzen erzeugte Abdeckung kann entweder durch Verkleinerung des Düsenabstands (10 Zoll ist besser als 20 Zoll), durch Erhöhung des Volumens (75 gpa haben sich bewährt), durch Erhöhung des Drucks (mindestens 80 psi) oder durch den Wechsel zu kleineren Düsenspitzen, die den Sprühstrahl in einem Winkel auf die Baumkrone richten, erhöht werden. Verwenden Sie wasserempfindliches Papier, um die Sprühabdeckung zu überprüfen. Beziehen Sie sich auf die aktuelle Cornell Schädlingsbekämpfungsrichtlinien für den kommerziellen Gemüseanbau um eine aktuelle Liste der verfügbaren Fungizide zu erhalten, und befolgen Sie die Anweisungen auf dem Etikett.

Die Entwicklung von Fungizidresistenzen und die daraus resultierende fehlende Bekämpfung ist bei mobilen Fungiziden aufgrund ihrer Wirkweise an einer Stelle immer ein Problem. Stämme des Mehltaupilzes, die gegen solche Fungizide resistent (unempfindlich) sind, wurden überall in den Vereinigten Staaten gefunden. Auch in anderen Regionen der Welt wurde eine verminderte Empfindlichkeit gegenüber Fungiziden aus verschiedenen chemischen Gruppen festgestellt. Daher sollten stets Maßnahmen ergriffen werden, um das Risiko der Selektion resistenter Erregerstämme zu minimieren: Anwendung mobiler Fungizide zusammen mit Kontaktfungiziden, Anwendung nur dann, wenn es zum Schutz des Ertrags am nötigsten ist (was in der Regel zu Beginn der Krankheitsentwicklung der Fall ist), Verwendung der höchsten angegebenen Dosierungen und möglichst abwechselnder Einsatz mobiler Fungizide mit unterschiedlichen Wirkungsweisen, wie sie durch ihren FRAC-Code angegeben werden (Triflumizol und Myclobutanil haben dieselbe Wirkungsweise; sie gehören zur FRAC-Gruppe 3). Darüber hinaus sollten Sie eine möglichst hohe Spritzdeckung erzielen und auch nicht-chemische Bekämpfungsmethoden anwenden. Zu Beginn von Mehltauepidemien war die Häufigkeit von Stämmen, die gegen mobile Fungizide resistent sind, in der Regel so gering, dass mindestens eine Anwendung dieser Fungizide den Mehltau unterdrückt hat. Diese Situation könnte sich in Zukunft ändern. Die Häufigkeit resistenter Stämme kann nach einer Behandlung rasch zunehmen.

In den Vereinigten Staaten sind mehrere für den ökologischen Landbau zugelassene Biopestizide gegen diese Krankheit registriert. Diese Produkte enthalten natürliche Inhaltsstoffe wie pflanzliche Öle, Bikarbonate, Wasserstoffdioxid und Lipopeptide. Da es sich um Kontaktmittel handelt, ist eine gute Abdeckung für eine wirksame Bekämpfung entscheidend. Die in Universitätsversuchen untersuchten Produkte haben eine unterschiedliche Wirksamkeit gezeigt, wobei einige so wirksam waren wie herkömmliche Kontaktfungizide.

Quelle: VegetableMDonLine

Bei FieldClimate wird das Risiko von Mehltau durch die Sensoren Blattnässe und Temperatur erkannt. Die Bedingungen für eine optimale Entwicklung des Pilzerregers sind:

• Regen und freie Feuchtigkeit auf der Pflanzenoberfläche sind ungünstig.
• Eine mittlere Temperatur von 68-80°F (20°C-27°C) ist günstig; eine Infektion kann bei 50-90°F !0°C-32°C) auftreten. Die Entwicklung von Mehltau wird gestoppt, wenn die Tagestemperaturen mindestens 28°C (100°F) betragen.
• Die Anfälligkeit der Blätter ist 16 bis 23 Tage nach der Entfaltung am größten.

Die Bedingungen am 20. Juli und Anfang August waren für den Pilzerreger sehr günstig. In diesen Zeiträumen lag die Temperatur zwischen 20°C und 27°C und es war relativ trocken (keine Blattnässeperioden).