Le principali malattie da Septoria del grano sono due. Si tratta della Septoria tritici blotch, provocata dal fungo Septoria tritici (teleomorfo: Mycophaerella graminicola) e Septoria nodorum la macchia, causata dal fungo Septoria nodorum (teleomorfo: Leptosphaeria nodorum). Entrambe le malattie causano gravi perdite di resa che, secondo le stime, variano dal 31 al 53% (Eyal, 1981; Babadoost e Herbert, 1984; Polley e Thomas, 1991). A livello mondiale, sono colpiti più di 50 milioni di ettari di grano, che crescono principalmente nelle aree ad alta piovosità. Negli ultimi 25 anni, queste malattie sono aumentate e sono diventate un importante fattore limitante per la produzione di grano in alcune aree. In caso di gravi epidemie, i chicchi delle cultivar di grano sensibili si raggrinziscono e non sono adatti alla macinazione. Le epidemie di Septoria tritici blotch e Septoria nodorum blotch del grano sono associate a condizioni climatiche favorevoli (piogge frequenti e temperature moderate), a pratiche culturali specifiche, alla disponibilità di inoculo e alla presenza di cultivar di grano suscettibili (Eyal et al., 1987).

Septoria spp. Biologia

A seguire Erick De Wolf, Macchia di Septoria Tritici, Kansas State University, aprile 2008 Septoria tritici La macchia fogliare, nota come macchia a chiazze, è causata dal fungo Septoria tritici. È diffusa in tutte le aree di coltivazione del grano del mondo e rappresenta un problema serio in molte regioni. La Septoria tritici è più dannosa quando la malattia attacca le foglie superiori e le teste delle varietà sensibili alla fine della stagione.

Sintomi

Septoria tritici I sintomi della macchia appaiono per la prima volta in autunno. I sintomi iniziali sono piccole macchie gialle sulle foglie. Queste lesioni diventano spesso di colore marrone chiaro con l'invecchiamento e i corpi fruttiferi fungini possono essere visti incorporati nelle lesioni sulle foglie. Le lesioni hanno forma irregolare e variano da ellittiche a lunghe e strette (Figura 1). Le lesioni contengono piccole macchioline nere e rotonde che sono i corpi fruttiferi del fungo. I corpi fruttiferi neri assomigliano a grani di pepe nero e di solito possono essere visti senza l'ausilio di una lente d'ingrandimento. La malattia inizia sulle foglie inferiori e progredisce gradualmente verso la foglia bandiera. Anche le guaine fogliari sono suscettibili di attacco. Nelle annate umide, il fungo della maculatura fogliare può spostarsi sui cespi e provocare lesioni marroni sulle glume e sulle alette, note come glume blotch. Queste lesioni diventano spesso di colore marrone chiaro con l'avanzare dell'età e i corpi fruttiferi del fungo sono spesso visibili all'interno delle lesioni sulle infiorescenze.

La fase di glume blotch può causare una significativa perdita di resa, ma la relazione tra la gravità della malattia e la perdita di resa non è ben compresa. Septoria tritici La macchia può essere confusa con altre malattie fogliari che presentano sintomi molto simili: la macchia abbronzante e il Stagonspora nodorum macchia, ad esempio. È comune che le piante siano infettate da più di una di queste malattie fogliari e può essere necessario un esame di laboratorio per diagnosticare con precisione quali sono le malattie più diffuse. Gli esami di laboratorio sono quasi sempre necessari per distinguere la causa della glume blotch. La conoscenza della specie non è importante per le decisioni di irrorazione, perché tutte e tre le malattie rispondono in modo simile ai fungicidi. Tuttavia, sapere quali sono le malattie più diffuse è una parte importante della selezione varietale, perché diversi geni controllano la resistenza alle malattie.
Il modo più affidabile per distinguere la Septoria tritici dalle altre malattie è la presenza di corpi fruttiferi neri. Il fungo che causa l'abbronzatura non produce questo tipo di struttura riproduttiva. Tuttavia, in condizioni di umidità, il fungo che causa la macchia di Stagonospora nodorum produce corpi fruttiferi di colore marrone chiaro. Oltre alla differenza di colore, queste strutture sono anche più piccole di quelle prodotte da Septoria tritici.

Ciclo di vita

Septoria tritici sopravvive durante l'estate sui residui di una precedente coltivazione di grano e inizia le infezioni in autunno. È stato dimostrato che il fungo è in grado di sopravvivere in associazione con altri ospiti erbacei e con i semi di grano. Queste fonti del fungo sono probabilmente più importanti quando i residui di grano sono assenti. Indipendentemente dalle pratiche di rotazione o di gestione dei residui, di solito c'è abbastanza inoculo per avviare le infezioni autunnali. Septoria tritici La macchia è favorita da un clima fresco e umido. L'intervallo di temperatura ottimale è compreso tra 16 e 21 °C; tuttavia, le infezioni possono verificarsi durante i mesi invernali con temperature fino a 5 °C. L'infezione richiede almeno 6 ore di bagnatura delle foglie e fino a 48 ore di bagnatura per la massima infezione. Una volta avvenuta l'infezione, il fungo impiega dai 21 ai 28 giorni per sviluppare i caratteristici corpi fruttiferi neri e produrre una nuova generazione di spore. Le spore prodotte in questi corpi fruttiferi sono emesse in masse appiccicose e richiedono la pioggia per essere spruzzate sulle foglie superiori e sui cespi.

Infezione da Septoria tritici

Picnidiospore di S. tritici germinano in acqua libera da entrambe le estremità della spora o dalle cellule intercalari (Weber, 1922). La germinazione delle spore non inizia prima di circa 12 ore dal contatto con la foglia. I tubi germinativi crescono in modo casuale sulla superficie della foglia. Weber (1922) ha osservato solo la penetrazione diretta tra le cellule epidermiche, ma altri hanno concluso che la penetrazione attraverso gli stomi aperti e chiusi è il mezzo principale di penetrazione nell'ospite (Benedict, 1971; Cohen e Eyal, 1993; Hilu e Bever, 1957). Kema et al. (1996) hanno osservato solo la penetrazione stomatica. Le ife che crescono attraverso gli stomi si restringono fino a circa 1 μm di diametro, per poi allargarsi una volta raggiunta la cavità substomatica.

Le ife crescono parallelamente alla superficie della foglia sotto le cellule epidermiche, poi attraverso il mesofillo fino alle cellule dell'epidermide inferiore, ma non all'interno dell'epidermide. Non si formano austorie e la crescita ifale è limitata dalle cellule sclerenchimatiche intorno ai fasci vascolari, tranne quando le ife sono molto dense. I fasci vascolari non vengono invasi. Le ife crescono intercellulari lungo le pareti cellulari attraverso il mesofillo, ramificandosi al setto o al centro della cellula. Non compaiono sintomi macroscopici per circa 9 giorni, a parte qualche cellula morta, ma le cellule del mesofillo muoiono rapidamente dopo 11 giorni. I picnidi si sviluppano nelle camere substomatiche. Le ife raramente si sviluppano nelle cellule dell'ospite (Hilu e Bever, 1957; Kema et al, 1996; Weber, 1922).

L'infezione ha successo solo dopo almeno 20 ore di elevata umidità. Solo poche chiazze marroni si sviluppano se le foglie rimangono bagnate per 5-10 ore dopo la deposizione delle spore (Holmes e Colhoun, 1974) o fino a 24 ore (Kema et al., 1996). Le relazioni ospite-parassita sono le stesse sui frumenti resistenti o suscettibili. La germinazione delle spore sulla superficie fogliare è la stessa indipendentemente dalla suscettibilità. Il numero di penetrazioni riuscite è all'incirca lo stesso, ma la crescita delle ife è più rapida nelle cultivar suscettibili, con conseguente aumento delle lesioni. Le ife si estendono 44 Sessione 2 - B.M. Cunfer oltre l'area necrotica in tutte le cultivar. Una tossina può avere un ruolo nella patogenesi (Cohen e Eyal, 1993; Hilu e Bever, 1957). Al contrario, la colonizzazione è stata notevolmente ridotta su una linea resistente (Kema et al., 1996).

Stagonospora (Septoria) e Septoria patogena dei cereali: Il processo di infezione

B.M. Cunfer, Dipartimento di Patologia Vegetale, Università della Georgia, Griffin, GA

Il processo di infezione è stata studiata più intensamente per Stagonospora (Septoria) nodorum e Septoria tritici. Uno studio approfondito su Septoria passerinii è disponibile. Quasi tutte le informazioni riportate riguardano l'infezione da parte delle picnidiospore. Tuttavia, il processo di infezione per altre forme di spore è abbastanza simile. Le informazioni presentate riguardano soprattutto l'infezione delle foglie in condizioni ottimali. Alcuni studi sono stati condotti con piantine intatte, mentre altri sono stati condotti con foglie staccate. L'infezione del coleoptile e della piantina di grano da parte di S. nodorum è stato descritto in dettaglio da Baker (1971) e rivisto da Cunfer (1983). Sebbene non siano stati fatti confronti precisi, sembra che il processo di infezione presenti molte somiglianze in ogni sistema ospite-parassita e sia tipico di molti patogeni necrotrofi. Le informazioni sui fattori che influenzano lo sviluppo dei sintomi e l'espressione della malattia sono escluse, ma sono state esaminate da altri autori (Eyal et al., 1987; King et al., 1983; Shipton et al., 1971). È inclusa una sintesi dei fattori che influenzano la longevità delle spore sulla superficie fogliare.

Ruolo del Cirro e sopravvivenza delle spore sulla superficie della foglia Le informazioni più dettagliate sulla funzione dei cirri che racchiudono le picnidiospore essudate dal picnidio sono relative a S. nodorum. Il cirro è un gel composto da composti proteici e saccaridici. La sua composizione e funzione sono simili a quelle di altri funghi delle Sphaeropsidales (Fournet, 1969; Fournet et al., 1970; Griffiths e Peverett, 1980). Le funzioni principali dei componenti del cirro sono la protezione delle picnidiospore dal disseccamento e la prevenzione della germinazione precoce.

Il cirro protegge le picnidiospore in modo che alcune rimangano vitali per almeno 28 giorni (Fournet, 1969). Quando il cirro è stato diluito con acqua, se la concentrazione della soluzione di cirro era >20%, meno di 10% di picnidiospore germinavano. A una concentrazione inferiore, i componenti forniscono nutrienti che stimolano la germinazione delle spore e l'allungamento dei tubi germinali. La lunghezza dei tubi germinativi è aumentata fino alla concentrazione di 15% cirri, per poi diminuire moderatamente a concentrazioni più elevate (Harrower, 1976). Brennan et al. (1986) hanno riportato una maggiore germinazione nel liquido cirro diluito. I componenti dei cirri hanno ridotto la germinazione a 10-60% di umidità relativa. Una volta che le spore si sono disperse, gli effetti stimolatori del liquido cirroso sono probabilmente trascurabili (Griffiths e Peverett, 1980).

A 35-45% di umidità relativa, le spore di S. tritici nei cirri sono rimaste vitali per almeno 60 giorni (Gough e Lee, 1985). I componenti del cirro possono agire come inibitori della germinazione delle spore, oppure l'alto potenziale osmotico del cirro può impedire la germinazione. Le picnidiospore di S. nodorum non sono sopravvissute per 24 ore a un'umidità relativa superiore a 80% a 20 C. Le spore sono sopravvissute per due o più settimane a un'umidità relativa di <10% (Griffiths e Peverett, 1980). Quando il liquido dei cirri di S. nodorum è stata diluita con acqua, circa due terzi delle picnidiospore hanno perso vitalità entro 8 ore e dopo 30 ore alla luce del giorno, solo 5% hanno germinato. Quando le spore sono state conservate al buio, 40% sono rimaste vitali dopo 30 ore (Brennan et al., 1986).

Conidi secchi di S. nodorumall'ombra e alla luce diretta del sole, sono sopravvissuti all'aperto per almeno 56 ore (Fernandes e Hendrix, 1986a). La germinazione delle picnidiospore di S. nodorum è stata inibita dai raggi UV-B continui (280-320 nm), mentre la germinazione delle spore di S. nodorum è stata inibita dalla luce solare. S. tritici non lo era. L'estensione del germe in presenza di UV-B continui è stata inibita per entrambi i funghi, rispetto all'oscurità (Rasanayagam et al., 1995).

Infezione da Septoria nodorum

Il processo di penetrazione nell'ospite e lo sviluppo di S. nodorum all'interno della foglia è stato esaminato in dettaglio da diversi ricercatori (Baker e Smith, 1978, Bird e Ride 1981, Karjalainen e Lounatmaa, 1986; Keon e Hargreaves, 1984; Straley, 1979; Weber, 1922). Le picnidiospore tendono a depositarsi nelle depressioni tra due cellule epidermiche e molti tentativi di penetrazione fogliare iniziano da lì. Le spore germinano sulla superficie della foglia in risposta all'umidità libera (Fernandes e Hendrix, 1986b). Iniziano a germinare 2-3 ore dopo la deposizione e dopo 8 ore la germinazione può raggiungere 90%. La penetrazione fogliare inizia circa 10 ore dopo la deposizione delle spore (Bird e Ride, 1981; Brönnimann et al., 1972; Holmes e Colhoun, 1974).

All'inizio della germinazione, il tubo germinale è circondato da un materiale amorfo che si attacca alla foglia. I tubi germinali che crescono da entrambe le estremità di una spora e dalle cellule intercalari tendono a crescere lungo le depressioni tra le cellule e sono spesso orientati lungo l'asse lungo della foglia (O'Reilly e Downes, 1986). Le ife provenienti da spore che non si trovano in depressioni crescono in modo casuale con occasionali ramificazioni (Straley, 1979). Si forma un appressorium con un piolo di infezione che penetra la cuticola e le pareti periclinali delle cellule epidermiche direttamente nel lume cellulare, provocando una rapida morte cellulare.

Molte penetrazioni avvengono dapprima per via sottocuticolare o per crescita laterale dell'ifa all'interno della parete cellulare prima della crescita nel citoplasma (Bird e Ride, 1981; O'Reilly e Downes, 1986). La penetrazione attraverso gli stomi, sia aperti che chiusi, è più rapida di quella diretta (Harrower, 1976; Jenkins, 1978; O'Reilly e Downes, 1986; Straley, 1979). I tubi germinali si ramificano in corrispondenza degli stomi e delle giunzioni delle cellule epidermiche. La penetrazione di un tubo germinale in uno stoma può avvenire senza la formazione di un appressorio. A volte la penetrazione avviene attraverso i tricomi (Straley, 1979). A quanto pare, la maggior parte dei tentativi di penetrazione fallisce, con la formazione di dense papille nelle cellule nel sito del tentativo di penetrazione (Karjalainen e Lounatmaa, 1986; Bird e Ride, 1981).

Dopo la penetrazione, le cellule epidermiche muoiono rapidamente e si lignificano, mentre le ife crescono nel mesofillo. Le cellule del mesofillo si deformano e il materiale lignificato si deposita all'esterno di alcune cellule, che poi collassano. La lignificazione avviene prima che le ife raggiungano la cellula. Il processo è lo stesso in tutte le cultivar, ma si sviluppa più lentamente nelle cultivar resistenti. Le ife si sviluppano a livello intercellulare tra le cellule epidermiche e poi nel mesofillo. Quando il mesofillo viene penetrato, il deterioramento dei cloroplasti inizia in 6-9 giorni (Karjalainen e Lounatmaa, 1986).

Tuttavia, il tasso di fotosintesi inizia a diminuire entro un giorno dall'infezione e prima che i sintomi siano visibili (Krupinsky et al, 1973). Il tessuto sclerenchima intorno ai fasci vascolari impedisce l'infezione del tessuto vascolare. I fasci vascolari bloccano la diffusione delle ife attraverso il mesofillo, tranne quando il tessuto sclerenchima è giovane e non completamente formato (Baker e Smith, 1978).

Stagonospora nodorum rilascia un'ampia gamma di enzimi che degradano la parete cellulare, tra cui amilasi, pectina metil esterasi, poligalatturonasi, xilanasi e cellulasi, in vitro e durante l'infezione delle foglie di grano (Baker, 1969; Lehtinen, 1993; Magro, 1984). Le informazioni relative alla degradazione della parete cellulare da parte degli enzimi concordano con le osservazioni istologiche. Questi enzimi possono agire in combinazione con le tossine. La sensibilità agli enzimi può essere correlata alla resistenza e al tasso di colonizzazione fungina (Magro, 1984). Come molti necrotrofi, i patogeni di Septoria e Stagonospora producono composti fitotossici in vitro. Il deterioramento e la morte delle cellule prima della crescita delle ife nel tessuto mesofillo (Bird e Ride, 1981) sono coerenti con la produzione di tossine. Tuttavia, non è stato stabilito un ruolo definitivo delle tossine nel processo di infezione e la loro relazione con la resistenza dell'ospite (Bethenod et al, 1982; Bousquet et al, 1980; Essad e Bousquet, 1981; King et al, 1983). Le differenze nell'areale di diffusione dell'ospite tra i ceppi di grano e orzo adattati di S. nodorum può essere correlata alla produzione di tossine (Bousquet e Kollmann, 1998). L'inizio della germinazione delle spore e la percentuale di spore germinate non sono influenzate dalla suscettibilità dell'ospite (Bird e Ride, 1981; Morgan 1974; Straley, 1979; Straley e Scharen, 1979; Baker e Smith, 1978).
Bird e Ride (1981) hanno riportato che l'estensione dei tubi germinativi sulla superficie fogliare era più lenta sulle cultivar resistenti rispetto a quelle suscettibili. Questo meccanismo, espresso almeno 48 ore dopo la deposizione delle spore, indica una resistenza pre-penetrazione all'allungamento dei tubuli germinativi. Il numero di penetrazioni riuscite nelle cultivar resistenti è minore e la penetrazione procede più lentamente nelle cultivar resistenti (Baker e Smith, 1978; Bird e Ride, 1981). La lignificazione è stata proposta per limitare l'infezione sia nelle cultivar resistenti che in quelle suscettibili, ma altri fattori hanno rallentato lo sviluppo fungino nelle linee resistenti. Nelle linee sensibili, le ife a crescita più rapida possono sfuggire alla lignificazione delle cellule dell'ospite.Quattro giorni dopo l'inoculazione dell'orzo con un biotipo di grano isolato di S. nodorumLe ife sono cresciute attraverso la cuticola e talvolta negli strati esterni di cellulosa delle pareti cellulari epidermiche. Sotto le ife di penetrazione si depositano spesse papille che non penetrano nelle cellule (Keon e Hargreaves, 1984).

Infezione da Septoria passerinii: Green e Dickson (1957) presentano una descrizione dettagliata del processo di infezione del S. passerinii sull'orzo. Il processo di infezione è simile a S. tritici. Come per S. tritici, il tempo necessario per la penetrazione fogliare è notevolmente più lungo rispetto a quello necessario per la penetrazione fogliare. S. nodorum. I tubi germinali si ramificano e crescono sulla superficie fogliare in modo casuale, ma talvolta anche lungo le depressioni tra le cellule epidermiche. La penetrazione della foglia avviene quasi esclusivamente attraverso gli stomi. Le ife germinative si ingrossano e, se la penetrazione non ha successo, le ife continuano ad allungarsi. Non si verifica alcuna penetrazione 48 ore dopo la deposizione delle spore. Dopo 72 ore, i tubi germinativi si addensano sugli stomi, crescono tra le cellule di guardia e sulle facce delle cellule accessorie e nelle cavità substomali. Solo raramente si osserva una penetrazione diretta tra le cellule epidermiche.
La germinazione delle spore e la penetrazione nell'ospite sono identiche nelle cultivar resistenti e in quelle suscettibili. Nelle cultivar resistenti l'estensione delle ife all'interno delle foglie è molto minore e si osservano papille su molte pareti cellulari, ma non su tutte. Le ife crescono sotto l'epidermide da uno stoma all'altro, ma non penetrano tra le cellule epidermiche. Il mesofillo è colonizzato, ma non si formano austorie. Dopo che le cellule del mesofillo diventano necrotiche, le cellule epidermiche collassano. Lo sviluppo miceliare nella foglia è scarso e di solito bloccato dai fasci vascolari. Nelle foglie più giovani, se la guaina vascolare è meno sviluppata, le ife passano tra il fascio e l'epidermide. I picnidi si formano nelle cavità substomatiche, soprattutto sulla superficie superiore della foglia (Green e Dickson, 1957).

Fattori che influenzano la longevità delle spore Sulla superficie fogliare Tra i patogeni Stagonospora e Septoria dei cereali, informazioni definitive sul processo di infezione sono state riportate soltanto per S. nodorum, S. tritici, e S. passerinii. Come molti altri patogeni necrotrofi, nessuno dei due gruppi di patogeni suscita la reazione di ipersensibilità. Una differenza significativa nel processo di infezione tra i patogeni della Septoria e della Stagonospora è che la germinazione e la penetrazione delle spore procede molto più rapidamente per i patogeni della Stagonospora. S. nodorum che per S. tritici e S. passerinii. Ciò ha un'influenza significativa sull'epidemiologia delle malattie.
Gli agenti patogeni della Septoria penetrano nella pianta principalmente attraverso gli stomi, mentre S. nodorum penetra sia direttamente che attraverso gli stomi. S. nodorum penetra e uccide le cellule epidermiche rapidamente, ma S. tritici e S. passerinii non uccidono le cellule epidermiche fino a quando le ife non si sono ramificate attraverso il mesofillo della foglia e inizia una rapida necrosi. Gli studi istologici sulla crescita fungina in seguito alla penetrazione dell'ospite corrispondono ai dati generati dagli studi epidemiologici sulla resistenza dell'ospite. La resistenza rallenta la velocità di colonizzazione dell'ospite, ma non ha effetti apprezzabili sul processo di sviluppo delle lesioni.

I meccanismi che controllano la risposta dell'ospite, siano essi legati a enzimi e tossine o ad altri metaboliti rilasciati dai patogeni durante l'infezione, non sono ancora chiari. Ci sono poche informazioni sull'infezione da parte delle ascospore. Il processo di infezione è probabilmente molto simile a quello delle picnidiospore. Le ascospore di Phaeosphaeria nodorum germinano in un ampio intervallo di temperature e i loro tubi germinativi penetrano direttamente nella foglia. Tuttavia, secondo Rapilly et al. (1973), le ascospore, a differenza delle picnidiospore, non germinano in acqua libera.

Modello di infezione da Septoria spp.

Le infezioni da Septoria sono possibili a basse temperature, mentre temperature inferiori a 7°C potrebbero non portare a un'infezione entro 2 giorni. La temperatura ottimale della malattia si raggiunge in un'area compresa tra 16 e 21°C. Le infezioni sono possibili in un periodo di elevata umidità relativa o di bagnatura fogliare di 14 ore o più. Per soddisfare queste condizioni abbiamo deciso di suddividere i modelli in infezioni deboli, moderate e gravi. Le infezioni deboli possono essere date se è possibile per il patogeno infettare i tessuti dell'ospite. Ciò significa che le infezioni deboli possono avvenire se le temperature sono minime e i periodi di bagnatura delle foglie sono di durata critica. Un'infezione moderata avrà luogo in condizioni in cui la maggior parte delle prove di infecondità porta a risultati ragionevoli e le infezioni gravi hanno luogo in condizioni in cui il patogeno ha condizioni ottimali per l'infezione.

Inizio dell'infezione dopo una pioggia di 0,5 mm. Abbiamo deciso di non utilizzare un modello per la formazione di picnidi. Si presume che la condizione necessaria per la formazione di picnidi sia un periodo con umidità relativa superiore a 85%. Il tempo di vita dei picnidi è previsto in 24 ore. In tutti i climi in cui Septoria tritici ha la possibilità di infettare, troveremo 2 ore che soddisfano questa condizione quasi ogni giorno intorno al sorgere del sole.

Valutazione della gravità dell'infezione: Per poter valutare la pressione dell'infezione da Septoria tritici tra lo stadio 10 (prima foglia al coleoptile) e lo stadio 32 (nodo due almeno 2 cm al di sopra del nodo 1) e tra il 32 e il 51 (inizio della raccolta) dobbiamo valutare la gravità delle infezioni in base alle condizioni climatiche. Questa valutazione viene effettuata in una scala da 1 a 5. Si assegna una gravità di 1 se le condizioni per un'infezione debole sono soddisfatte ed è piovuto meno di 5 mm, altrimenti la gravità corrispondente sarà 2. La gravità è 3 se l'infezione moderata è completa e ha piovuto meno di 5 mm. Se ha piovuto più di 5 mm durante un'infezione moderata o meno di 5 mm durante un'infezione grave, viene assegnata una gravità pari a 4.

Un'infezione grave, con più di 5 mm di pioggia, corrisponde a un valore di gravità pari a 5.

Septoria tritici valutazione della pressione della malattia: Il clima è solo uno dei fattori che determinano la pressione della malattia sul campo. Gli altri due fattori sono la storia del campo e la suscettibilità della varietà coltivata. Se riusciamo ad accumulare i valori di gravità della malattia dallo stadio 10 allo stadio 32 fino a un valore di 4, possiamo aspettarci una debole pressione della malattia da parte del clima. Se questo valore raggiunge il 6 possiamo aspettarci una pressione moderata della malattia e se raggiunge il 10 possiamo aspettarci una pressione elevata del clima. Conoscere la suscettibilità della varietà e la storia del campo ci porterà a spruzzare o meno su una pressione debole o moderata della malattia in questa situazione. Un valore di accumulo pari a 10 può comunque portare a un'irrorazione nello stadio 32. La decisione di irrorare in uno stadio successivo dipende maggiormente dal clima primaverile. Se riusciamo ad accumulare i valori di gravità dallo stadio 10 a un valore di 6, possiamo aspettarci una debole pressione della malattia. Se questo valore raggiunge 10, possiamo aspettarci una pressione moderata della malattia e se questo valore raggiunge 15, possiamo aspettarci una pressione elevata della malattia a causa della situazione climatica.

Nell'FieldClimate mostriamo il Septoria tritici Severità insieme alle tre diverse gravità dell'infezione in un unico grafico (vedi sopra). A causa delle piogge e dei lunghi periodi di bagnatura delle foglie, le condizioni per una grave infezione da parte di S. tritici sono stati a tutto campo il 14 e il 16 maggio. I livelli di gravità raggiungono il valore massimo di 5 il 14 maggio, il che significa che il rischio di infezione è elevato.

La biologia dell'infezione di Stagonospora nodorum differisce in parte da quella di S. tritici, ma questa differenza non è abbastanza grande da richiedere un modello separato. Pertanto, suggeriamo di utilizzare questo modello per l'intero complesso di malattie da Stagnospora e Septoria nei cereali, tra cui S. passerinii. S. tritici e S. passerinii tendono a necessitare di periodi di bagnatura delle foglie più lunghi rispetto a S. nodorum. Nelle aree con un'alta pressione di S. nodorum Le infezioni classificate come deboli, con un valore di gravità pari a 2, devono essere trattate più seriamente che in altre aree.

Per Septoria nodorum Un modello di rischio è riportato nell'FieldClimate (vedi sopra). Il 17 giugno e il 7 luglio è stato determinato un rischio elevato (100%). A seconda dello stadio delle piante suscettibili all'infezione, è necessario prendere in considerazione misure di protezione delle piante se il rischio raggiunge l'80% (vedi anche previsioni del tempo, protezione delle piante). Se il rischio era di 100% e l'infezione era già stata accertata, è necessario adottare misure fitosanitarie sistemiche (applicazioni curative) per proteggere la pianta.