Existují dvě hlavní choroby pšenice způsobené septoriózou. Jedná se o skvrnitost Septoria tritici, kterou vyvolává houba Septoria tritici (teleomorf: Mycophaerella graminicola) a Septoria nodorum skvrnitost způsobená houbou Septoria nodorum (teleomorf: Leptosphaeria nodorum). Obě choroby způsobují vážné ztráty na výnosech, které se údajně pohybují od 31 do 53 % (Eyal, 1981; Babadoost a Herbert, 1984; Polley a Thomas, 1991). Celosvětově je napadeno více než 50 milionů ha pšenice, která roste především v oblastech s vysokými srážkami. Během posledních 25 let se počet těchto chorob zvyšuje a v některých oblastech se staly hlavním limitujícím faktorem produkce pšenice. Při silných epidemiích jsou zrna náchylných odrůd pšenice scvrklá a nejsou vhodná k mletí. Epidemie skvrnitosti pšenice Septoria tritici a Septoria nodorum jsou spojeny s příznivými povětrnostními podmínkami (časté deště a mírné teploty), specifickými pěstitelskými postupy, dostupností inokula a přítomností náchylných odrůd pšenice (Eyal et al., 1987).

Septoria spp. Biologie

Za Erickem De Wolfem, Septoria Tritici Blotch, Kansas State University, duben 2008 Septoria tritici známá jako skvrnitá skvrnitost listů, je způsobena houbou Septoria tritici. Je rozšířena ve všech oblastech pěstování pšenice na světě a v mnoha regionech představuje vážný problém. Největší škody způsobuje skvrnitost Septoria tritici, když choroba napadá horní listy a hlávky náchylných odrůd v pozdní fázi sezóny.

Příznaky

Septoria tritici příznaky skvrnitosti se poprvé objevují na podzim. Prvními příznaky jsou malé žluté skvrny na listech. Tyto léze se stárnutím často zbarvují do světle hnědé barvy a na řapících lze pozorovat plodnice houby usazené v lézích. Léze mají nepravidelný tvar a jsou od eliptických až po dlouhé a úzké (obrázek 1). Léze obsahují malé kulaté černé skvrny, které jsou plodnicemi houby. Černé plodnice vypadají jako zrnka černého pepře a obvykle je lze spatřit bez použití lupy. Choroba začíná na spodních listech a postupně se šíří na praporcovité listy. K napadení jsou náchylné i listové pochvy. Ve vlhkých letech se může houba skvrnitost listů přesunout na hlávky a způsobit hnědé léze na lodyhách a řapících, známé jako skvrnitost lodyh. Tyto léze se stárnutím často zbarvují do světle hnědé barvy a v lézích na řapících jsou často vidět plodnice houby.

Fáze skvrnitosti lusků může způsobit značné ztráty na výnosech, ale vztah mezi závažností choroby a ztrátami na výnosech není dobře znám. Septoria tritici skvrnitost může být zaměněna s jinými chorobami listů, které mají velmi podobné příznaky: opálení a skvrnitost listů. Stagonspora nodorum například skvrny. Je běžné, že rostliny jsou napadeny více než jednou z těchto listových chorob, a pro přesnou diagnózu, které choroby převažují, může být nutné laboratorní vyšetření. K rozlišení příčiny skvrnitosti listů je téměř vždy nutné laboratorní vyšetření. Znalost druhu není pro rozhodnutí o postřiku důležitá, protože všechny tři choroby reagují na fungicidy podobně. Znalost toho, které choroby jsou nejrozšířenější, je však důležitou součástí výběru odrůd, protože odolnost vůči chorobám řídí různé geny.
Nejspolehlivějším způsobem, jak odlišit skvrnitost Septoria tritici od ostatních chorob, je přítomnost černých plodnic. Houba, která způsobuje opálenou skvrnitost, tento typ rozmnožovací struktury nevytváří. Houba způsobující skvrnitost Stagonospora nodorum však za vlhkých podmínek vytváří světle hnědé plodnice. Kromě barevného rozdílu jsou tyto struktury také menší než struktury vytvářené houbou Septoria tritici.

Životní cyklus

Septoria tritici přežívá přes léto na zbytcích předchozí úrody pšenice a na podzim iniciuje infekci. Existují určité důkazy o tom, že houba je schopna přežívat ve spojení s jinými hostiteli trav a osivem pšenice. Tyto zdroje houby jsou pravděpodobně nejdůležitější v době, kdy zbytky pšenice chybí. Bez ohledu na střídání plodin nebo postupy hospodaření s rezidui je obvykle dostatek inokula k iniciaci podzimních infekcí. Septoria tritici skvrnitosti svědčí chladné a vlhké počasí. Optimální teplota je 16 až 21 °C, avšak k infekci může dojít i v zimních měsících při teplotách do 5 °C. Infekce vyžaduje alespoň 6 hodin vlhka v listech a pro maximální infekci je zapotřebí až 48 hodin vlhka. Po infekci trvá houbě 21 až 28 dní, než vytvoří charakteristické černé plodnice a vyprodukuje novou generaci spor. Výtrusy vytvořené v těchto plodnicích jsou vylučovány v lepkavé hmotě a vyžadují déšť, aby se rozstříkly na horní listy a hlávky.

Infekce způsobená Septoria tritici

Pycnidiospory S. tritici klíčí ve volné vodě z obou konců výtrusů nebo z interkalárních buněk (Weber, 1922). Výtrusy začínají klíčit až asi 12 hodin po kontaktu s listem. Zárodečné trubice rostou náhodně po povrchu listu. Weber (1922) pozoroval pouze přímý průnik mezi epidermálními buňkami, ale jiní dospěli k závěru, že primárním způsobem průniku do hostitele je průnik přes otevřená i uzavřená stomata (Benedict, 1971; Cohen a Eyal, 1993; Hilu a Bever, 1957). Kema et al. (1996) pozorovali pouze průnik přes stomy. Hyfy prorůstající stomaty se zužují na průměr asi 1 μm a po dosažení substomatální dutiny se rozšiřují.

Hyfy rostou rovnoběžně s povrchem listu pod epidermálními buňkami, pak přes mezofyl k buňkám spodní epidermis, ale ne do epidermis. Netvoří se haustoria a růst hyf je omezen sklerenchymatickými buňkami kolem cévních svazků, s výjimkou případů, kdy jsou hyfy velmi husté. Cévní svazky nejsou napadeny. Hyfy prorůstají mezibuněčně podél buněčných stěn mezofylem a větví se na přepážce nebo uprostřed buňky. Přibližně 9 dní se neobjevují žádné makroskopické příznaky s výjimkou občasné mrtvé buňky, ale po 11 dnech buňky mezofylu rychle odumírají. Pyknidy se vyvíjejí v substomatálních komůrkách. Hyfy zřídka prorůstají do buněk hostitele (Hilu a Bever, 1957; Kema et al, 1996; Weber, 1922).

K úspěšné infekci dochází až po nejméně 20 hodinách vysoké vlhkosti. Pouze několik hnědých skvrn se vyvinulo, pokud listy zůstaly vlhké 5 až 10 hodin po uložení spor (Holmes a Colhoun, 1974) nebo až 24 hodin (Kema et al., 1996). Vztahy mezi hostitelem a parazitem jsou stejné na rezistentní i náchylné pšenici. Klíčení spor na povrchu listů je stejné bez ohledu na citlivost. Počet úspěšných průniků je přibližně stejný, ale růst hyf je rychlejší u náchylných odrůd, což vede k většímu počtu lézí. Hyfy přesahují 44 Session 2 - B.M. Cunfer nekrotickou oblast u všech odrůd. V patogenezi může hrát roli toxin (Cohen a Eyal, 1993; Hilu a Bever, 1957). Naproti tomu na rezistentní linii byla kolonizace značně omezena (Kema et al., 1996).

Stagonospora (Septoria) a Septoria Pathogens of Cereals: Proces infekce

B.M. Cunfer, Department of Plant Pathology, University of Georgia, Griffin, GA

Proces infekce byla nejintenzivněji studována pro Stagonospora (Septoria) nodorum a Septoria tritici. Jedna hloubková studie o Septoria passerinii je k dispozici. Téměř všechny uváděné informace se týkají infekce pyknidiosporami. Proces infekce u jiných forem spor je však dosti podobný. Uvedené informace se většinou týkají infekce listů za optimálních podmínek. Některé studie byly provedeny s neporušenými semenáčky, zatímco jiné s oddělenými listy. Infekce koleoptile a semenáčků pšenice pomocí S. nodorum podrobně popsal Baker (1971) a recenzoval Cunfer (1983). Ačkoli nebylo provedeno žádné přesné srovnání, zdá se, že proces infekce má mnoho podobností v každém systému hostitel-parazit a je typický pro mnoho nekrotrofních patogenů. Informace o faktorech ovlivňujících vývoj symptomů a projevy choroby jsou vyloučeny, ale byly přezkoumány jinými autory (Eyal et al., 1987; King et al., 1983; Shipton et al., 1971). Je zahrnut přehled faktorů ovlivňujících životnost spor na povrchu listů.

Úloha Cirrusu a přežití spor na povrchu listů Nejpodrobnější informace o funkci cirru, který obaluje pyknidiospory vylučované z pyknidia, se týkají S. nodorum. Cirrus je gel složený z bílkovinných a sacharidových sloučenin. Jeho složení a funkce jsou podobné jako u jiných hub z čeledi Sphaeropsidales (Fournet, 1969; Fournet et al., 1970; Griffiths a Peverett, 1980). Primárními úlohami cirrových složek jsou ochrana pyknidiospor před vysycháním a prevence předčasného klíčení.

Cirrus chrání pyknidiospory, takže některé z nich zůstávají životaschopné nejméně 28 dní (Fournet, 1969). Když byl cirrus zředěn vodou, pokud byla koncentrace roztoku cirrusu >20%, vyklíčilo méně než 10% pyknidiospor. Při nižší koncentraci poskytují složky živiny, které stimulují klíčení spor a prodlužování zárodečných trubic. Délka zárodečných trubic se zvyšovala až do koncentrace 15% cirru, poté při vyšších koncentracích mírně klesala (Harrower, 1976). Brennan et al. (1986) zaznamenali větší klíčivost ve zředěné cirrusové tekutině. Složky cirru snižovaly klíčivost při relativní vlhkosti 10-60%. Po rozptýlení spor jsou stimulační účinky cirrusové tekutiny pravděpodobně zanedbatelné (Griffiths a Peverett, 1980).

Při relativní vlhkosti 35-45% jsou spory S. tritici v cirri zůstaly životaschopné nejméně 60 dní (Gough a Lee, 1985). Složky cirry mohou působit jako inhibitor klíčení spor nebo může klíčení bránit vysoký osmotický potenciál cirry. Pycnidiospory S. nodorum nepřežily 24 hodin při relativní vlhkosti vzduchu nad 80% při 20 C. Spory přežívaly dva týdny nebo déle při relativní vlhkosti <10% (Griffiths a Peverett, 1980). Když se cirrusová tekutina S. nodorum byla zředěna vodou, přibližně dvě třetiny pyknidiospor ztratily životaschopnost během 8 hodin a po 30 hodinách na denním světle vyklíčilo pouze 5%. Při skladování spor ve tmě zůstalo 40% životaschopných i po 30 hodinách (Brennan et al., 1986).

Suché konidie S. nodorum, ve stínu i na přímém slunci, přežily venku nejméně 56 hodin (Fernandes a Hendrix, 1986a). Klíčení pyknidiospor S. nodorum bylo inhibováno kontinuálním UV-B zářením (280-320 nm), zatímco klíčení pyknidiospor S. nodorum bylo inhibováno kontinuálním UV-B zářením (280-320 nm). S. tritici nebyla. Prodlužování zárodečných trubic pod nepřetržitým UV-B zářením bylo u obou hub ve srovnání s tmou inhibováno (Rasanayagam et al., 1995).

Infekce způsobená Septoria nodorum

Proces pronikání do hostitele a vývoj S. nodorum uvnitř listu podrobně zkoumalo několik badatelů (Baker a Smith, 1978, Bird a Ride 1981, Karjalainen a Lounatmaa, 1986; Keon a Hargreaves, 1984; Straley, 1979; Weber, 1922). Pyknidiospory mají tendenci ulpívat v prohlubních mezi dvěma epidermálními buňkami a mnoho pokusů o průnik do listů začíná právě tam. Spory klíčí na povrchu listů v reakci na volnou vlhkost (Fernandes a Hendrix, 1986b). Začínají klíčit 2-3 hodiny po uložení a po 8 hodinách může klíčivost dosáhnout 90%. Pronikání do listů začíná asi 10 hodin po uložení spor (Bird a Ride, 1981; Brönnimann a kol., 1972; Holmes a Colhoun, 1974).

Na počátku klíčení je zárodečná trubice obklopena amorfním materiálem, který se přichytí k listu. Zárodečné trubice vyrůstající z obou konců výtrusu a z interkalárních buněk mají tendenci růst podél prohlubní mezi buňkami a jsou často orientovány podél dlouhé osy listu (O'Reilly a Downes, 1986). Hyfy ze spor, které nejsou v prohlubních, rostou náhodně s občasným větvením (Straley, 1979). Vytváří se apresorium s infekčním kolíkem, který proniká kutikulou a periklinálními stěnami epidermálních buněk přímo do buněčného lumen, což vede k rychlé buněčné smrti.

Mnoho průniků je nejprve subkutikulárních nebo dochází k bočnímu růstu hyfy v buněčné stěně před růstem do cytoplazmy (Bird a Ride, 1981; O'Reilly a Downes, 1986). Dochází také k průniku skrz otevřené i uzavřené žaludky, který může být rychlejší než přímý průnik (Harrower, 1976; Jenkins, 1978; O'Reilly a Downes, 1986; Straley, 1979). Zárodečné trubice se rozvětvují u žaludů a spojů epidermálních buněk. K průniku zárodečné trubice do stomatu může dojít bez vytvoření apresoria. Někdy dochází k průniku přes trichomy (Straley, 1979). Většina pokusů o průnik je zřejmě neúspěšná, v buňkách v místě pokusu o průnik se vytvářejí husté papily (Karjalainen a Lounatmaa, 1986; Bird a Ride, 1981).

Po proniknutí epidermální buňky rychle odumírají a lignifikují a hyfy prorůstají do mezofylu. Buňky mezofylu se deformují a lignifikovaný materiál se ukládá vně některých buněk, které pak zkolabují. K lignifikaci dochází dříve, než hyfy dosáhnou buňky. Tento proces je u všech odrůd stejný, ale u odolných odrůd se vyvíjí pomaleji. Hyfy prorůstají mezibuněčně mezi epidermálními buňkami a poté do mezofylu. Po proniknutí do mezofylu začíná za 6-9 dní degradace chloroplastů (Karjalainen a Lounatmaa, 1986).

Rychlost fotosyntézy však začíná klesat během jednoho dne po infekci a dříve, než se projeví příznaky (Krupinsky et al, 1973). Sklerenchymatické pletivo kolem cévních svazků zabraňuje infekci cévního pletiva. Cévní svazky blokují šíření hyf mezofylem s výjimkou případů, kdy je sklerenchymatické pletivo mladé a není plně vytvořeno (Baker a Smith, 1978).

Stagonospora nodorum uvolňuje in vitro a během infekce listů pšenice širokou škálu enzymů degradujících buněčnou stěnu, včetně amylázy, pektinmetylesterázy, polygalakturonázy, xylanázy a celulázy (Baker, 1969; Lehtinen, 1993; Magro, 1984). Informace týkající se degradace buněčných stěn enzymy se shodují s histologickými pozorováními. tyto enzymy mohou působit ve spojení s toxiny. Citlivost na enzymy může souviset s odolností a rychlostí kolonizace houbami (Magro, 1984). Stejně jako mnoho nekrotrofů produkují patogeny Septoria a Stagonospora fytotoxické sloučeniny in vitro. Zničení a odumření buněk před prorůstáním hyf do mezofylového pletiva (Bird a Ride, 1981) odpovídá produkci toxinů. Definitivní úloha toxinů v procesu infekce a jejich vztah k odolnosti hostitele však nebyla stanovena (Bethenod et al, 1982; Bousquet et al, 1980; Essad a Bousquet, 1981; King et al, 1983). Rozdíly v hostitelském spektru mezi kmeny adaptovanými na pšenici a ječmen S. nodorum může souviset s produkcí toxinů (Bousquet a Kollmann, 1998). Iniciace klíčení spor a procento vyklíčených spor nejsou ovlivněny citlivostí hostitele (Bird a Ride, 1981; Morgan 1974; Straley, 1979; Straley a Scharen, 1979; Baker a Smith, 1978).
Bird a Ride (1981) uvádějí, že prodlužování zárodečných trubic na povrchu listů bylo pomalejší u rezistentních než u náchylných odrůd. Tento mechanismus, který se projevil nejméně 48 hodin po uložení spor, ukazuje na odolnost vůči prodlužování zárodečných trubic před průnikem. U rezistentních odrůd bylo méně úspěšných průniků a průnik probíhal na rezistentních odrůdách pomaleji (Baker a Smith, 1978; Bird a Ride, 1981). Bylo navrženo, že lignifikace omezuje infekci u rezistentních i náchylných kultivarů, ale další faktory zpomalují vývoj houby u rezistentních linií. U náchylných linií mohou rychleji rostoucí hyfy unikat lignifikaci hostitelských buněk. čtyři dny po inokulaci ječmene izolátem biotypu pšenice z. S. nodorum, hyfy prorůstaly kutikulou a někdy i vnějšími celulózovými vrstvami buněčných stěn epidermis. Pod pronikajícími hyfami byly uloženy silné papily a buňky nepronikaly (Keon a Hargreaves, 1984).

Infekce způsobená Septoria passerinii: Green a Dickson (1957) podrobně popisují proces infekce u bakterií S. passerinii na ječmeni. Proces infekce je podobný S. tritici. Stejně jako u S. tritici je doba potřebná k proniknutí do listů podstatně delší než u S. tritici. S. nodorum. Zárodečné trubice se větví a rostou po povrchu listů náhodně, ale někdy i podél prohlubní mezi epidermálními buňkami. Do listů pronikají téměř výhradně přes průduchy. Klíční hyfy nabobtnají, a pokud je průnik neúspěšný, hyfy se dále prodlužují. K pronikání nedochází 48 hodin po uložení spor. Po 72 hodinách se zárodečné trubice zahušťují přes stomata, prorůstají mezi ochrannými buňkami a na urfaces akcesorních buněk a do substomatálních dutin. Přímý průnik mezi epidermální buňky je pozorován jen výjimečně.
Klíčivost spor a pronikání do hostitele jsou stejné u rezistentních i náchylných odrůd. Na rezistentních odrůdách je mnohem menší rozšíření hyf uvnitř listů a na mnoha, ale ne všech buněčných stěnách jsou pozorovány papily. Hyfy prorůstají pod epidermis z jednoho stomu do druhého, ale nepronikají mezi epidermální buňky. Mezofyl je kolonizován, ale netvoří se haustoria. Po odumření buněk mezofylu se epidermální buňky rozpadají. Vývoj mycelia v listu je řídký a obvykle blokovaný cévními svazky. U mladších listů, pokud je cévní pochva méně vyvinutá, procházejí hyfy mezi svazkem a epidermis. Pyknidy se tvoří v substomatálních dutinách, většinou na horním povrchu listu (Green a Dickson, 1957).

Faktory ovlivňující životnost spor na povrchu listů Z patogenů Stagonospora a Septoria na obilovinách byly definitivní informace o infekčním procesu podány pouze pro tyto patogeny. S. nodorum, S. triticia S. passerinii. Stejně jako mnoho jiných nekrotrofních patogenů ani tato skupina patogenů nevyvolává hypersenzitivní reakci. Významný rozdíl v infekčním procesu mezi patogeny Septoria a Stagonospora spočívá v tom, že klíčení a pronikání spor probíhá mnohem rychleji u S. nodorum než pro S. tritici a S. passerinii. To má významný vliv na epidemiologii onemocnění.
Patogeny rodu Septoria pronikají do rostliny především skrze žaludky, kdežto S. nodorum proniká přímo i přes žaludky. S. nodorum rychle proniká do epidermálních buněk a zabíjí je, ale S. tritici a S. S. passerinii nezabíjejí epidermální buňky, dokud se hyfy nerozvětví v mezofylu listů a nezačne rychlá nekróza. Histologické studie růstu hub po proniknutí do hostitele odpovídají údajům získaným z epidemiologických studií rezistence hostitele. Rezistence zpomaluje rychlost kolonizace hostitele, ale nemá výrazný vliv na proces vývoje lézí.

Mechanismy, které řídí reakci hostitele, ať už se týkají enzymů a toxinů nebo jiných metabolitů uvolňovaných patogeny během infekce, jsou stále nejasné. O infekci askosporami je málo informací. Proces infekce je pravděpodobně velmi podobný procesu infekce pyknidiosporami. Askospory Phaeosphaeria nodorum klíčí v širokém rozmezí teplot a jejich zárodečné trubice pronikají přímo do listu. Podle Rapillyho et al. (1973) však askospory na rozdíl od pyknidiospor neklíčí ve volné vodě.

Model infekce Septoria spp.

Septoriové infekce jsou možné při nízkých teplotách, zatímco teploty pod 7 °C nemusí vést k infekci do dvou dnů. Optimální teploty pro onemocnění je dosaženo v oblasti 16 až 21 °C. Infekce jsou možné v období vysoké relativní vlhkosti vzduchu nebo vlhkosti listů trvajícím 14 hodin nebo déle. Pro splnění těchto podmínek jsme se rozhodli rozdělit na modely pro slabé, středně silné a silné infekce. Slabé infekce lze uvést, pokud je možné, aby patogen infikoval tkáň hostitele. To znamená, že ke slabým infekcím může dojít, pokud jsou teploty v minimech a doba vlhkosti listů je kritické délky. Středně silná infekce proběhne za podmínek, kdy většina infekčních pokusů vede k přiměřeným výsledkům, a silná infekce proběhne za podmínek, kdy má patogen optimální podmínky pro infekci.

Infekce začíná po dešti 0,5 mm. Rozhodli jsme se nepoužít model pro tvorbu pyknid. Předpokládáme, že podmínkou potřebnou pro tvorbu pyknid je období s relativní vlhkostí vyšší než 85%. Doba života pyknid se předpokládá 24 hodin. Ve všech klimatických podmínkách, kde má Septoria tritici šanci se infikovat, najdeme 2 hodiny splňující tuto podmínku téměř každý den kolem východu slunce.

Hodnocení závažnosti infekce: Abychom mohli posoudit infekční tlak Septoria tritici mezi fází 10 (první listový žlábek) a fází 32 (druhý uzel alespoň 2 cm nad uzlem 1) a mezi 32 a 51 (začátek hlávkování), musíme posoudit závažnost infekce na základě klimatických podmínek. Toto hodnocení se provádí ve stupnici od 1 do 5. Závažnost 1 je dána, pokud je splněna podmínka pro slabou infekci a napršelo méně než 5 mm, jinak bude odpovídající stupeň závažnosti 2. Závažnost 3 je uvedena, pokud je splněna podmínka slabé infekce a napršelo méně než 5 mm. Pokud při středně těžké infekci napršelo více než 5 mm nebo při těžké infekci méně než 5 mm, je uvedena závažnost 4.

Silná infekce s více než 5 mm srážek odpovídá hodnotě závažnosti 5.

Septoria tritici hodnocení tlaku nemoci: Podnebí je pouze jedním z faktorů, které rozhodují o tlaku chorob na poli. Dalšími dvěma faktory jsou historie pole a náchylnost pěstované odrůdy. Pokud můžeme shrnout hodnoty intenzity choroby od fáze 10 do fáze 32 do hodnoty 4, můžeme očekávat slabý tlak choroby způsobený klimatem. Pokud tato hodnota dosáhne 6, můžeme očekávat mírný tlak choroby a pokud dosáhne 10, můžeme očekávat silný tlak choroby ze strany klimatu. Znalost náchylnosti odrůdy a historie pole nás v této situaci povede k tomu, zda postřik provádět, nebo neprovádět při slabém nebo středním tlaku choroby. Mít kumulativní hodnotu 10 může vést k postřiku ve fázi 32 tak jako tak. Rozhodnutí o postřiku v pozdější fázi je více závislé na jarním klimatu. Pokud jsme schopni kumulovat hodnoty intenzity od fáze 10 na hodnotu 6, můžeme očekávat slabý tlak choroby. Pokud tato hodnota dosáhne 10, můžeme očekávat mírný tlak choroby, a pokud tato hodnota dosáhne 15, můžeme očekávat silný tlak choroby v důsledku klimatické situace.

V programu FieldClimate ukazujeme Septoria tritici Závažnost společně se třemi různými závažnostmi infekce v jednom grafu (viz výše). Vzhledem k dešťovým srážkám a dlouhým obdobím vlhka listů jsou podmínky pro silnou infekci způsobenou S. tritici 14. a 16. května bylo plné pole. Úrovně závažnosti dosahují 14. května nejvyšší hodnoty 5, což znamená, že nyní hrozí vysoké riziko infekce.

Biologie infekce Stagonospora nodorum se do jisté míry liší od biologie S. tritici, ale tento rozdíl není dostatečně velký na to, aby byl vytvořen samostatný model. Proto navrhujeme použít tento model pro celý komplex stagnosporóz a septorióz v obilovinách včetně S. passerinii. S. tritici a S. passerinii potřebují delší období vlhkosti listů než S. nodorum. V oblastech s vysokým tlakem S. nodorum infekce klasifikované jako slabé s hodnotou závažnosti 2 by měly být léčeny závažněji než v jiných oblastech.

Pro Septoria nodorum rizikový model je uveden v FieldClimate (viz výše). Vysoké riziko bylo určeno na zasedání 17. června a 7. července (100%). V závislosti na stádiu náchylnosti rostlin k infekci je třeba vzít v úvahu opatření na ochranu rostlin, pokud riziko dosáhne 80% (viz také předpověď počasí, ochranná ochrana rostlin). Pokud riziko dosáhlo 100% a byla již zjištěna infekce, je třeba provést systémová opatření na ochranu rostlin (kurativní aplikace).