Oidio è una malattia comune delle cucurbitacee in campo e in serra nella maggior parte delle aree del mondo. Sebbene tutte le cucurbitacee siano suscettibili, i sintomi sono meno comuni su cetrioli e meloni perché molte cultivar commerciali presentano una resistenza. Questa malattia può rappresentare un grave problema per la produzione. La quantità di raccolto si riduce a causa della diminuzione delle dimensioni o del numero di frutti o della durata del periodo di raccolta. La senescenza precoce delle foglie infette può comportare una riduzione della qualità del mercato perché i frutti si scottano o maturano prematuramente o in modo incompleto. Questi frutti hanno una scarsa conservabilità (zucca invernale), bassi solidi solubili con conseguente scarso sapore (melone), scarso colore della scorza (zucca) e manici raggrinziti e scoloriti (zucca). Lo stress causato dalle malattie può portare a imperfezioni sulla buccia dei frutti, come macchioline, rientranze in rilievo ed edema. Inoltre, l'infezione da oidio predispone le piante ad altre malattie, in particolare alla peronospora del fusto.

Podosphaera xanthii (precedentemente noto come Sphaerotheca fuliginea e S. fusca) e Erysiphe cichoracearum sono i due funghi più comunemente registrati come causa dell'oidio delle cucurbitacee. E. cichoracearum era considerato l'organismo causale primario nella maggior parte del mondo prima del 1958. Oggi, P. xanthii si trova più comunemente in tutto il mondo. È possibile che si sia verificato un cambiamento nella predominanza di questi due funghi o che l'organismo causale sia stato identificato in modo errato. P. xanthii è un patogeno più aggressivo di E. cichoracearum. E. cichoracearum potrebbe avere un optimum di temperatura più basso, dato che questa specie si trova principalmente durante i periodi più freschi della primavera e dell'inizio dell'estate e P. xanthii sembra progredire più rapidamente durante i mesi più caldi. I conidi (spore prodotte per via asessuata) di E. cichoracearum e P. xanthii sono difficili da distinguere e i cleistoteci, che sono corpi fruttiferi sessuali (strutture contenenti spore prodotte attraverso la riproduzione sessuale), sono stati osservati meno comunemente. Di conseguenza, questi funghi sono stati confusi. Spesso il nome del fungo è stato riportato senza una valida conferma. I criteri per differenziare questi funghi in base allo stadio conidiale non sono stati identificati fino agli anni '60. Il principale criterio utilizzato è la presenza di spore. Il principale criterio utilizzato è la presenza di corpi fibrosi nei conidi di P. xanthii. Sulla base di questi criteri, P. xanthii è risultato essere il fungo predominante, piuttosto che E. cichoracearum come sostenuto in precedenza, in diversi Paesi. Durante le recenti indagini E. cichoracearum è stata riscontrata raramente e solo all'inizio dello sviluppo della malattia a New York e in altri Stati orientali.

Sintomi e segni

La crescita fungina bianca e polverosa si sviluppa sulle superfici delle foglie, sui piccioli e sugli steli. Di solito si sviluppa prima sulle foglie della corona, sulle foglie inferiori in ombra e sulle superfici inferiori delle foglie. Sulla superficie superiore delle foglie, di fronte alle colonie di oidio, possono formarsi delle macchie gialle. Le piante più vecchie vengono colpite per prime. Le foglie infette di solito appassiscono e muoiono. Le piante possono andare in senescenza prematuramente. L'infezione dei frutti si verifica raramente su anguria e cetriolo. Cleistothecia sono strutture di colore marrone scuro, di piccole dimensioni (diametro di circa 0,003 pollici), a malapena distinguibili senza una lente manuale. Si sviluppano tardivamente nella stagione di crescita. Le spore sessuali all'interno di queste strutture sono protette dalle condizioni avverse.

Ciclo della malattia

Si ritiene che l'inoculo iniziale principale sia costituito da conidi trasportati dall'aria e dispersi su lunghe distanze da luoghi in cui le colture di cucurbitacee vengono coltivate all'inizio dell'anno. I conidi rimangono vitali per 7-8 giorni sulla base dei risultati di studi di laboratorio. I funghi causali sono parassiti obbligati e quindi non possono sopravvivere in assenza di piante ospiti vive, se non come cleistoteci. Le possibili fonti locali di inoculo iniziale includono conidi di cucurbitacee coltivate in serra, cleistoteci e ospiti alternativi. I cleistoteci sono stati segnalati raramente negli Stati Uniti; tuttavia, anche quando sono presenti, possono essere trascurati. Entrambi i tipi di accoppiamento necessari per la riproduzione sessuale sono stati trovati in tutti gli Stati Uniti, compresa New York. Anche se P. xanthii e E. cichoracearum sono descritti come aventi un'ampia gamma di ospiti, è stato dimostrato che i ceppi di questi funghi sono specifici per l'ospite. Il ruolo di ospiti diversi dalle cucurbitacee come fonti di inoculo non è stato studiato. La verbena, una comune pianta ornamentale, potrebbe essere un'importante fonte di inoculo, soprattutto per le cucurbitacee coltivate come coltura o trapianto nella stessa serra della verbena.

L'oidio si sviluppa rapidamente sotto condizioni favorevoli perché la lunghezza di Il tempo che intercorre tra l'infezione e la comparsa dei sintomi è solitamente di soli 3-7 giorni e un gran numero di conidi può essere prodotto in breve tempo. Le condizioni favorevoli includono crescita densa delle piante e bassa intensità luminosa. Elevata umidità relativa è favorevole all'infezione e alla sopravvivenza dei conidi; tuttavia, l'infezione può avvenire a partire da 50% RH. La siccità favorisce la colonizzazione, la sporulazione e la dispersione. La pioggia e l'umidità libera sulla superficie della pianta sono sfavorevoli. Tuttavia, lo sviluppo della malattia avviene in presenza o in assenza di rugiada. La temperatura media di 68-80°F (20°C-27°C) è favorevole; l'infezione può verificarsi a 50-90°F (0°C-32°C). Lo sviluppo dell'oidio si arresta quando le temperature diurne raggiungono almeno i 28°C. Le piante in campo spesso non vengono colpite se non dopo l'inizio della fruttificazione. La suscettibilità delle foglie è massima da 16 a 23 giorni dopo la schiusura.

Controlli culturali e biologici

La resistenza genetica è ampiamente utilizzata nel cetriolo e nel melone ed è stata incorporata nella maggior parte delle altre colture di cucurbitacee. La maggior parte delle varietà di zucca e di zucca resistenti negli Stati Uniti contiene una o due copie dello stesso gene di resistenza principale proveniente da una cucurbitacea selvatica. La genetica della resistenza è diversa nel cetriolo e nel melone. Recentemente è stata rilevata una diminuzione del grado di soppressione ottenibile con le varietà resistenti, indicando un adattamento in Podosphaera xanthii. Le piante di cucurbitacee successive dovrebbero essere fisicamente separate o almeno piantate a monte di quelle più vecchie, perché le piante più vecchie possono fungere da fonte di conidi. Sono stati sviluppati fungicidi contenenti funghi antagonisti per il controllo biologico.

Controllo chimico

I fungicidi devono essere applicati dopo il rilevamento attraverso il DDS. Ispezionare le piante settimanalmente a partire da luglio e dopo l'inizio della fruttificazione (quando le piante diventano più suscettibili). Esaminare la superficie superiore e inferiore di cinque foglie più vecchie in ciascuno dei 10 siti o fino a quando non si riscontrano sintomi. Avviare un programma di irrorazione quando si riscontrano i sintomi. Una piantagione primaverile di zucche estive si infetterà per prima; pertanto, se disponibile, può essere usata come indicatore di quando iniziare la scouting delle colture di vite e delle successive piantagioni di zucche estive.

Per un programma preventivo, le applicazioni dovrebbero iniziare quando le piante iniziano a correre e/o a produrre frutti e le condizioni per le infezioni sono favorevoli. Per ottenere un controllo adeguato, il fungicida deve essere applicato sulla superficie inferiore delle foglie e sulle foglie basse della chioma della pianta, poiché il fungo si sviluppa meglio su queste superfici. Il modo migliore per ottenere questo risultato è utilizzare materiali mobili (ad esempio, quinoxifen, boscalid, triflumizolo). Un altro approccio consiste nel migliorare l'efficacia dei materiali di contatto (ad esempio, clorotalonil, rame) massimizzando la copertura dell'irrorazione sulla superficie inferiore delle foglie. Le irroratrici ad aria compressa sono uno dei mezzi più efficaci per aumentare la copertura e i depositi su tutte le superfici fogliari. La copertura prodotta dagli irroratori a barra idraulica tradizionali può essere aumentata diminuendo la distanza tra gli ugelli (10 pollici è meglio di 20 pollici), aumentando il volume (75 gpa ha funzionato bene), aumentando la pressione (almeno 80 psi) o passando a ugelli più piccoli che dirigono gli spruzzi ad angolo rispetto alla chioma. Utilizzare carta sensibile all'acqua per verificare la copertura del getto. Fare riferimento all'attuale Linee guida Cornell per la gestione dei parassiti nella produzione di ortaggi commerciali per un elenco aggiornato dei fungicidi disponibili e seguire le indicazioni dell'etichetta.

Lo sviluppo della resistenza ai fungicidi e il conseguente fallimento dei controlli è sempre una preoccupazione per i fungicidi mobili, a causa della loro modalità d'azione monosito. Ceppi del fungo dell'oidio resistenti (insensibili) a questi fungicidi sono stati trovati in tutti gli Stati Uniti. Anche in altre aree del mondo è stata rilevata una ridotta sensibilità ai fungicidi di diversi gruppi chimici. Pertanto, è necessario adottare sempre delle tattiche per ridurre al minimo il potenziale di selezione di ceppi di patogeni resistenti: applicare i fungicidi mobili con i fungicidi di contatto, applicarli solo quando sono più necessari per proteggere la resa (di solito all'inizio dello sviluppo della malattia), utilizzare le dosi più alte indicate in etichetta e alternare, quando possibile, fungicidi mobili con modalità d'azione diverse, come indicato dal loro codice FRAC (il triflumizolo e il miclobutanil hanno la stessa modalità d'azione; sono nel gruppo FRAC 3). Inoltre, massimizzate la copertura dell'irrorazione e utilizzate anche pratiche di controllo non chimico. All'inizio delle epidemie di oidio, la frequenza di ceppi resistenti ai fungicidi mobili è stata di solito sufficientemente bassa da far sì che almeno un'applicazione di questi fungicidi abbia soppresso l'oidio. Questa situazione potrebbe cambiare in futuro. La frequenza di ceppi resistenti può aumentare rapidamente dopo il trattamento.

Negli Stati Uniti sono registrati per questa malattia diversi biopesticidi approvati per la produzione biologica. Questi prodotti contengono ingredienti naturali come oli botanici, bicarbonati, biossido di idrogeno e lipopeptidi. Sono materiali di contatto, quindi una buona copertura è fondamentale per un controllo efficace. I prodotti valutati nelle prove universitarie hanno mostrato un'ampia gamma di efficacia, con alcuni che sono efficaci quanto i fungicidi di contatto convenzionali.

Fonte: VegetaleMDonLine

In FieldClimate il rischio di oidio è rilevato dai sensori: umidità delle foglie e temperatura. Le condizioni per lo sviluppo ottimale del patogeno fungino sono:

• La pioggia e l'umidità libera sulla superficie della pianta sono sfavorevoli.
• La temperatura media di 68-80°F (20°C-27°C) è favorevole; l'infezione può verificarsi a 50-90°F (0°C-32°C). Lo sviluppo dell'oidio si arresta quando le temperature diurne sono di almeno 28°C.
• La suscettibilità delle foglie è massima da 16 a 23 giorni dopo la schiusura.

Le condizioni del 20 luglio e dell'inizio di agosto sono state favorevoli al patogeno fungino. In questi periodi la temperatura era compresa tra i 20°C e i 27°C ed era tranquillamente asciutta (nessun periodo di bagnatura fogliare).