{"id":46594,"date":"2022-08-01T12:45:18","date_gmt":"2022-08-01T12:45:18","guid":{"rendered":"https:\/\/dev.metos.global\/?page_id=46594"},"modified":"2025-03-13T08:40:40","modified_gmt":"2025-03-13T08:40:40","slug":"disease-models-banana","status":"publish","type":"page","link":"https:\/\/metos.global\/it\/disease-models-banana\/","title":{"rendered":"Modelli di malattia - banana"},"content":{"rendered":"
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Banana<\/b> modelli di malattia\n<\/h2>\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t
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La banana \u00e8 uno dei frutti pi\u00f9 importanti a livello mondiale. Nella sua forma dolce, come Dollar Banana, e nella sua forma non dolce, in cucina, \u00e8 una delle principali componenti della dieta delle popolazioni dei paesi tropicali. Dalla fine del XIX secolo la banana inizia a diventare il frutto pi\u00f9 importante del commercio mondiale. Le banane prodotte in America Centrale e nei Caraibi iniziarono a essere esportate negli Stati Uniti e in Europa. Oggi la banana \u00e8 una parte importante della base frutticola dei paesi industriali. Con l'aumento dei redditi in Cina e nell'Europa orientale, nuovi mercati producono nuove richieste di banane.<\/p>

Ci sono due importanti\u00a0malattie da macchie fogliari<\/u> nelle banane:\u00a0Sigatoka giallo e Sigatoka nero<\/u>. La Sigatoka gialla causata dal fungo Mycosphaerella musicola si \u00e8 diffusa in tutte le aree di coltivazione delle banane, mentre la Sigatoka nera causata dal fungo M. fijiensis var. difformis<\/em>\u00a0\u00e8 stata riscontrata nelle Fiji. La Sigatoka nera mostra una virulenza molto pi\u00f9 elevata rispetto alla Sigatoka gialla e per questo motivo \u00e8 diventata la malattia pi\u00f9 importante per le banane nella maggior parte dei Paesi produttori.<\/p>\t\t\t\t\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t\t<\/div>\n\t\t<\/div>\n\t\t\t\t\t<\/div>\n\t\t<\/section>\n\t\t\t\t

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SIGATOKA NERO -<\/br>Micosphaerella Fijiensis<\/em><\/a><\/h2>\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t\t<\/div>\n\t\t<\/div>\n\t\t\t\t
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Malattia della sigatoka nera<\/h2>\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t
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Il lavoro si basa sui due articoli seguenti:<\/p>

- <\/strong>Malattia delle foglie nere;<\/span>\u00a0Parassiti e malattie delle Samoa americane numero 10, American Samoa Community College Community & Natural Resources Cooperative Research & Extension. 2004
- <\/strong>Sigatoka nera Un filo in pi\u00f9 per la coltivazione delle banane;<\/span>\u00a0Douglas H. Mar\u00edn, Del Monte Fresh Produce; Ronald A. Romero, Chiquita Brands; Mauricio Guzm\u00e1n, National Banana Corporation of Costa Rica; Turner B. Sutton, Universit\u00e0 di Stato della Carolina del Nord, Raleigh.<\/p>

L'infestazione fogliare nera (BLS), o \"Black Sigatoka\", \u00e8 la malattia fogliare pi\u00f9 dannosa del banano a livello mondiale. Colpisce la maggior parte delle aree tropicali e subtropicali, con perdite riportate di 30-50%. La prima segnalazione di BLS nel Pacifico risale a 40 anni fa nella Sigatoka Valley, nelle Fiji. La maggior parte dei fungicidi utilizzati nella produzione di banane serve a controllare la BLS. Il banano di tipo Cavendish \"Williams\", coltivato dalla maggior parte dei coltivatori commerciali, \u00e8 molto suscettibile alla malattia fungina. Le piante infette hanno un numero inferiore di foglie, il che porta a un numero inferiore di frutti e a frutti pi\u00f9 piccoli, a un raccolto ritardato, a una maturazione precoce e a frutti di qualit\u00e0 inferiore.<\/p>

Impatto potenziale<\/strong><\/h3>

La sigatoka nera causa la distruzione del tessuto fogliare del banano, che influisce sulle capacit\u00e0 fotosintetiche della pianta e pu\u00f2 ridurre le rese fino a 50%. La sigatoka nera \u00e8 uno dei principali fattori responsabili del declino delle industrie di esportazione delle banane nelle nazioni del Pacifico meridionale. Le piantagioni commerciali che producono banane per l'esportazione devono mantenere un costoso programma di irrorazione di fungicidi per controllare la sigatoka nera e sono state criticate per considerazioni ambientali e di salute umana. Tuttavia, se non controllati, i frutti prodotti su piante malate possono maturare prematuramente durante la spedizione e causare ulteriori perdite. La devastazione della malattia \u00e8 stata controllata con irrorazioni chimiche negli anni successivi (15-17 applicazioni di fungicidi), ma ci\u00f2 ha aumentato notevolmente i costi di produzione.<\/p>

Piante colpite<\/strong><\/h3>

I sintomi definitivi della Black sigatoka sono stati registrati solo su\u00a0Musa<\/em>\u00a0(Banane),\u00a0Musa paradisiaca<\/em>\u00a0(Piantaggine),\u00a0Musa acuminata<\/em>\u00a0(Banana selvatica) e\u00a0Musa acuminata<\/em>\u00a0(subsp.\u00a0bantesii<\/em>\u00a0e la subsp.\u00a0zebrina<\/em>). Le cultivar si differenziano per la loro reazione al patogeno. L'immunit\u00e0 non \u00e8 nota ed \u00e8 possibile che altre specie e sottospecie selvatiche di\u00a0Musa<\/em>\u00a0sono infetti, ma la malattia non si sviluppa in modo significativo.\u00a0Mycosphaerella fijiensis<\/em>\u00a0pu\u00f2 attaccare anche le piantine di banane selvatiche.<\/p>

Stagione in cui si verifica il fenomeno<\/strong><\/h3>

Le spore della sigatoka nera si formano prontamente durante le estati tropicali e subtropicali o in condizioni di\u00a0elevata umidit\u00e0 e precipitazioni<\/u>soprattutto se sulle foglie \u00e8 presente una pellicola d'acqua libera. Il principale mezzo di diffusione \u00e8 la pioggia o lo spruzzo di spore, ma pi\u00f9 avanti nello sviluppo della malattia le spore vengono anche rilasciate forzatamente nelle correnti d'aria. L'infezione si verifica sulle foglie pi\u00f9 giovani della pianta durante e subito dopo lo srotolamento, ma le foglie pi\u00f9 vecchie sono pi\u00f9 favorevoli allo sviluppo della malattia. I sintomi visivi evidenti compaiono circa 15-20 giorni dopo l'infezione iniziale.<\/p>

Sintomi<\/strong><\/h3>

I primi sintomi apparenti dell'infezione fogliare sono brevi linee bruno-rossastre lunghe circa 2 mm. Le linee si trasformano in striature marroni lunghe 20-30 mm che si allargano in macchie ellittiche, marroni sulla parte inferiore della foglia, nere sulla superficie superiore. Le macchie sono leggermente infossate e circondate da un alone giallastro. Successivamente, il centro della grande macchia diventa grigio, delimitato da una linea nera e da un alone giallo. Infine, le macchie si fondono, uccidendo la foglia.<\/p>

Epidemiologia<\/strong><\/h3>

Sia i conidi che le ascospore svolgono un ruolo nella diffusione della malattia. I conidi si formano in condizioni\u00a0di elevata umidit\u00e0<\/u>soprattutto in presenza di una pellicola d'acqua libera sulle foglie. Si formano durante lo sviluppo dei primi stadi della malattia (in particolare durante lo stadio 2 del trattino, lo stadio 3 della macchia e lo stadio 4 della macchia). I principali mezzi di dispersione sono la pioggia e gli spruzzi; i conidi non vengono staccati dal vento. I conidi sono associati soprattutto alla diffusione locale della malattia e sono importanti durante i periodi di elevata umidit\u00e0, di frequenti e forti piogge e di rovesci intermittenti.<\/p>

Perch\u00e9\u00a0M. fijiensis<\/em>\u00a0producendo relativamente pochi conidi, le ascospore sono considerate pi\u00f9 importanti nella diffusione della Sigatoka nera (4,20). Tuttavia, Jacome et al. (10) hanno affermato che i conidi sono in grado di causare quantit\u00e0 significative di malattia e i sintomi della malattia sono identici a quelli causati dall'infezione da ascospore. Ha indicato che i conidi diventano pi\u00f9 importanti durante i periodi di siccit\u00e0, quando lo sviluppo della malattia \u00e8 ritardato dalla presenza di condizioni climatiche meno favorevoli (10). Le ascospore sono il mezzo principale per\u00a0dispersione su distanze maggiori<\/u>\u00a0all'interno delle piantagioni e in nuove aree, e sono il mezzo abituale di diffusione durante i lunghi periodi di tempo umido (3,4,6,10, 11,15).<\/p>

Le ascospore sono prodotte in pseudoteche nelle lesioni mature, che sono comuni sulle foglie pi\u00f9 vecchie della pianta o nelle foglie morte che giacciono sul terreno. Meredith e Lawrence (14) hanno riportato che gli pseudoteci sono prodotti su entrambi i lati della superficie fogliare, ma un numero maggiore \u00e8 presente sulla superficie adassiale. Al contrario, Gauhl et al. (6) hanno riscontrato una maggiore produzione di pseudoteci e ascospore sulla superficie abassiale della foglia. Sebbene Burt et al. (2) abbiano riscontrato che per ogni pseudotecio vengono rilasciate circa 4,5 ascospore, questo numero sembra molto basso se si considera l'alta concentrazione di inoculo presente nell'aria dopo la pioggia (4).<\/p>

Rilascio di ascospore<\/strong><\/h3>

Richiede la presenza di una pellicola d'acqua dovuta alla pioggia o alla rugiada<\/u>\u00a0che imbibisce gli pseudoteci e provoca l'espulsione forzata delle ascospore attraverso lo strato limite della foglia, dove vengono disseminate dalle correnti d'aria (15,20).\u00a0La maturazione degli pseudoteci richiede una saturazione<\/u>\u00a0dei tessuti delle foglie morte per circa 48 ore (3,4,7,10,11,15). In condizioni hawaiane, le concentrazioni di ascospore sono aumentate durante la notte, hanno raggiunto il massimo intorno alle 06:00 e sono diminuite significativamente durante il giorno. Nei giorni di pioggia, i picchi di concentrazione si sono verificati poco dopo l'inizio della pioggia. Gli aumenti stagionali delle concentrazioni medie giornaliere di ascospore sono associati all'aumento delle precipitazioni e dell'umidit\u00e0 relativa (15). Gauhl (4), lavorando con le banane, ha riportato risultati simili in condizioni di Costa Rica. Mentre Meredith et al. (15) non hanno trovato prove che la produzione o il rilascio di ascospore fosse influenzato dalle temperature minime, Gauhl (4) ha determinato una riduzione della produzione di inoculo durante i mesi pi\u00f9 secchi (o meno piovosi) dell'anno nella zona caraibica del Costa Rica, che \u00e8 anche la stagione con le temperature pi\u00f9 basse. Le ascospore sono disperse dal vento; tuttavia, la dispersione a lunga distanza \u00e8 limitata a poche centinaia di chilometri a causa della loro suscettibilit\u00e0 alle radiazioni ultraviolette (17). Non \u00e8 stata dimostrata una relazione coerente tra la dispersione delle ascospore e lo sviluppo della malattia, limitando cos\u00ec l'utilit\u00e0 della cattura delle spore per la previsione della malattia (5,11). Le ascospore si depositano principalmente sulla superficie inferiore della foglia durante lo srotolamento di una nuova foglia, producendo un pattern di infezioni a bande sul lato esposto per primo, che riflette la maggiore deposizione di spore sulla foglia cilindrica di candela durante lo srotolamento rispetto all'intera lamina aperta della foglia. Di conseguenza, la maggior parte delle infezioni si verifica sulla superficie abassiale delle foglie (3,7).<\/p>

Infezione<\/strong><\/h3>

I tubi germinali impiegano circa 48-72 ore per penetrare negli stomi (1,20), anche se il fungo pu\u00f2 crescere epifiticamente sulla superficie fogliare per un massimo di 6 giorni prima di penetrare effettivamente nelle foglie (1).\u00a0Infezione riuscita<\/u>\u00a0\u00e8 promosso da un'estesa\u00a0periodi di elevata umidit\u00e0 e presenza di acqua libera sulle foglie<\/u>\u00a0(3,7,13). La germinazione massima avviene in presenza di acqua libera. I conidi germinano in un intervallo pi\u00f9 ampio di umidit\u00e0 relativa (da 92 a 100%) rispetto alle ascospore (da 98 a 100%). L'effetto di\u00a0temperatura<\/u>\u00a0sulla germinazione pu\u00f2 essere caratterizzata da una funzione di risposta quadratica, con un optimum stimato a 26,5\u00b0C (10). Stover (21) ha osservato la crescita massima dei tubi germinativi delle ascospore a\u00a0Da 26 a 28\u00b0C<\/u>\u00a0dopo 24 ore di incubazione. Jacome e Schuh (8,9) hanno riferito che le foglie pi\u00f9 vecchie sono pi\u00f9 suscettibili; tuttavia, E. Bureau (comunicazione personale) e Romero (18) hanno osservato che le foglie pi\u00f9 giovani sono pi\u00f9 suscettibili (dalla prima alla terza) di quelle pi\u00f9 vecchie.<\/p>

Periodo di incubazione<\/strong><\/h3>

Il tempo che intercorre tra l'infezione e la comparsa dei sintomi varia a seconda delle condizioni climatiche e della suscettibilit\u00e0 della pianta (68). Nel banano, si stima che il momento dell'infezione fogliare coincida con la comparsa di una nuova foglia dall'apice dello pseudofusto (20). In condizioni molto favorevoli in Costa Rica, e con un ospite suscettibile, il\u00a0periodo di incubazione<\/u>\u00a0pu\u00f2 essere di 13-14 giorni, mentre durante i periodi di clima sfavorevole, la durata del periodo di incubazione pu\u00f2 estendersi fino a 35 giorni. Rapporti simili provengono dalla Nigeria e riguardano la piantaggine (16). Durante la stagione delle piogge, il periodo di incubazione era di 14 giorni, mentre nella stagione secca era di 24 giorni. La durata del periodo di incubazione varia anche in base alla suscettibilit\u00e0 della cultivar a M. fijiensis. Il periodo di incubazione \u00e8 stato rispettivamente di 26,2 e 25,1 giorni nelle cultivar FHIA 1 e FHIA 2, due ibridi sintetici tetraploidi sviluppati da FHIA, rispetto ai 22,4 giorni della cultivar suscettibile Grande Naine (19).<\/p>

Dopo essere penetrate nella foglia, le ife di <M. fijiensis<\/em>\u00a0colonizzano le cellule adiacenti per circa 7 giorni senza alcuna evidenza di rottura delle cellule. Le ife vegetative possono emergere dagli stomi e crescere sulla superficie della foglia e penetrare negli stomi adiacenti o produrre conidiofori e conidi. Questa crescita epifita permette al fungo di colonizzare il tessuto fogliare adiacente, con conseguente rapido sviluppo dei sintomi (4,20).\u00a0M. fijiensis<\/em>\u00a0ha una maggiore capacit\u00e0 di penetrare in diversi stomi rispetto a\u00a0M. musicola<\/em>, che risulta in una maggiore macchia rispetto al precedente patogeno (20).<\/p>

Periodo latente<\/strong><\/h3>

Sebbene i conidi possano essere prodotti nelle lesioni che presentano i primi sintomi di\u00a0M. fijiensis<\/em>\u00a0e contribuiscono all'epidemia, il periodo di latenza \u00e8 definito dal momento in cui il fungo inizia a produrre lesioni con pseudoteche e ascospore mature, che sono la principale fonte di inoculo. Come il periodo di incubazione, anche il periodo di latenza varia in base alle condizioni climatiche, alla suscettibilit\u00e0 dell'ospite e all'intensit\u00e0 delle infezioni. Il periodo di latenza varia da 25 giorni durante la stagione delle piogge (da giugno a dicembre) a 70 giorni durante la stagione secca a Guapiles, in Costa Rica. Quando il clima \u00e8 molto favorevole alla fuoriuscita delle ascospore e all'infezione, si verificano molte infezioni sulle foglie. Quando le infezioni sono dense, si aggregano rapidamente in uno stadio di sviluppo molto precoce, accelerando la comparsa di macchie mature caratterizzate dalla presenza di pseudoteche e ascospore (22). In queste condizioni, le foglie vengono rapidamente e gravemente danneggiate. Il periodo di latenza varia anche in base al livello di resistenza. Ad esempio, il tempo trascorso dall'emergenza delle foglie al primo sintomo di macchia matura nelle stesse condizioni naturali per la cultivar Currar\u00e9, una banana da cucina appartenente al sottogruppo della piantaggine, \u00e8 stato di 44 giorni rispetto ai 34 giorni della cultivar Valery, una banana appartenente al sottogruppo Cavendish (4). Il termine \"tempo di sviluppo della malattia\" \u00e8 ampiamente utilizzato nella letteratura sulla banana ai tropici per indicare il periodo di latenza, ed \u00e8 definito come il tempo che intercorre tra l'infezione e la formazione di macchie mature. Un altro termine comunemente usato nella letteratura sul banano \u00e8 \"tempo di evoluzione dei sintomi\" o \"periodo di transizione\", che \u00e8 il tempo che intercorre tra i primi sintomi e la comparsa delle macchie mature (6). Il tempo di evoluzione dei sintomi fornisce una buona indicazione della velocit\u00e0 con cui la malattia progredisce sulle foglie.<\/p>

Letteratura:<\/em><\/p>