{"id":46594,"date":"2022-08-01T12:45:18","date_gmt":"2022-08-01T12:45:18","guid":{"rendered":"https:\/\/dev.metos.global\/?page_id=46594"},"modified":"2025-03-13T08:40:40","modified_gmt":"2025-03-13T08:40:40","slug":"disease-models-banana","status":"publish","type":"page","link":"https:\/\/metos.global\/es\/disease-models-banana\/","title":{"rendered":"Modelos de enfermedad - pl\u00e1tano"},"content":{"rendered":"
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Pl\u00e1tano<\/b> modelos de enfermedad\n<\/h2>\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t
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El pl\u00e1tano es una de las frutas m\u00e1s importantes del mundo. En su forma dulce como pl\u00e1tano d\u00f3lar y en su forma no dulce para cocinar, es parte principal de la dieta de los habitantes de los pa\u00edses tropicales. Desde finales del siglo XIX, el pl\u00e1tano empieza a convertirse en la fruta m\u00e1s importante del comercio mundial. El pl\u00e1tano producido en Am\u00e9rica Central y el Caribe empez\u00f3 a exportarse a EE.UU. y Europa. Hoy en d\u00eda, el pl\u00e1tano es una parte importante de la base frut\u00edcola de los pa\u00edses industrializados. Con el aumento de los ingresos en China y Europa del Este, los nuevos mercados est\u00e1n generando nuevas demandas de pl\u00e1tanos.<\/p>

Hay dos aspectos importantes\u00a0enfermedades de las manchas foliares<\/u> en pl\u00e1tanos:\u00a0Sigatoka amarilla y Sigatoka negra<\/u>. La Sigatoka amarilla causada por el hongo Mycosphaerella musicola se ha extendido por todas las zonas productoras de pl\u00e1tanos, mientras que la Sigatoka negra causada por el hongo M. fijiensis var. difformis<\/em>\u00a0en Fiyi. La Sigatoka negra muestra una virulencia mucho mayor que la Sigatoka amarilla y por ello se ha convertido en la enfermedad m\u00e1s importante del pl\u00e1tano en la mayor\u00eda de los pa\u00edses productores.<\/p>\t\t\t\t\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t\t<\/div>\n\t\t<\/div>\n\t\t\t\t\t<\/div>\n\t\t<\/section>\n\t\t\t\t

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SIGATOKA NEGRA -<\/br>Mycosphaerella Fijiensis<\/em><\/a><\/h2>\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t\t<\/div>\n\t\t<\/div>\n\t\t\t\t
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Enfermedad de la Sigatoka negra<\/h2>\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t<\/div>\n\t\t\t\t
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El trabajo se basa en los dos art\u00edculos siguientes:<\/p>

- <\/strong>Enfermedad de la mancha negra de la hoja;<\/span>\u00a0Pests and Diseases of American Samoa Number 10, American Samoa Community College Community & Natural Resources Cooperative Research & Extension. 2004
- <\/strong>Sigatoka negra Un hilo conductor creciente para el cultivo del pl\u00e1tano;<\/span>\u00a0Douglas H. Mar\u00edn, Del Monte Fresh Produce; Ronald A. Romero, Chiquita Brands; Mauricio Guzm\u00e1n, Corporaci\u00f3n Bananera Nacional de Costa Rica; Turner B. Sutton, Universidad Estatal de Carolina del Norte, Raleigh.<\/p>

La mancha negra de la hoja (BLS), o \"Sigatoka negra\", es la enfermedad foliar m\u00e1s da\u00f1ina del pl\u00e1tano en todo el mundo. Afecta a la mayor\u00eda de las zonas tropicales y subtropicales, con p\u00e9rdidas de 30-50%. El primer caso de BLS en el Pac\u00edfico se registr\u00f3 hace 40 a\u00f1os en el valle de Sigatoka, Fiyi. La mayor\u00eda de los fungicidas utilizados en la producci\u00f3n bananera son para controlar el BLS. El pl\u00e1tano tipo Cavendish 'Williams', cultivado por la mayor\u00eda de los productores comerciales, es muy susceptible a la enfermedad f\u00fangica. Las plantas infectadas tienen menos hojas, lo que da lugar a menos frutos y m\u00e1s peque\u00f1os, un retraso en la cosecha, una maduraci\u00f3n prematura y una fruta de menor calidad.<\/p>

Impacto potencial<\/strong><\/h3>

La sigatoka negra causa la destrucci\u00f3n del tejido de la hoja del pl\u00e1tano, lo que afecta a la capacidad fotosint\u00e9tica de la planta y puede reducir el rendimiento hasta en un 50%. La sigatoka negra es uno de los principales factores responsables del declive de las industrias exportadoras de pl\u00e1tanos en las naciones del Pac\u00edfico Sur. Las plantaciones comerciales que producen pl\u00e1tanos para la exportaci\u00f3n tienen que mantener un costoso programa de fumigaci\u00f3n con fungicidas para controlar la sigatoka negra, y han sido criticadas por motivos medioambientales y de salud humana. Sin embargo, si no se controla, la fruta producida en plantas enfermas puede madurar prematuramente durante el transporte y causar m\u00e1s p\u00e9rdidas. Los estragos de la enfermedad se controlaron mediante pulverizaciones qu\u00edmicas en a\u00f1os posteriores (15-17 aplicaciones de fungicidas), pero esto increment\u00f3 considerablemente el coste de producci\u00f3n.<\/p>

Plantas afectadas<\/strong><\/h3>

S\u00f3lo se han registrado s\u00edntomas definitivos de sigatoka negra en\u00a0Musa<\/em>\u00a0(Pl\u00e1tanos),\u00a0Musa paradisiaca<\/em>\u00a0(Pl\u00e1tanos),\u00a0Musa acuminata<\/em>\u00a0(pl\u00e1tano silvestre) y\u00a0Musa acuminata<\/em>\u00a0(subsp.\u00a0bantesii<\/em>\u00a0y la subsp.\u00a0zebrina<\/em>). Los cultivares difieren en su reacci\u00f3n al pat\u00f3geno. Se desconoce la inmunidad y es posible que otras especies y subespecies silvestres de\u00a0Musa<\/em>\u00a0est\u00e1n infectados, pero la enfermedad no se desarrolla de forma significativa.\u00a0Mycosphaerella fijiensis<\/em>\u00a0tambi\u00e9n puede atacar la fase de pl\u00e1ntula de los pl\u00e1tanos silvestres.<\/p>

\u00c9poca en que se produce<\/strong><\/h3>

Las esporas de sigatoka negra se forman f\u00e1cilmente durante los veranos tropicales y subtropicales o en condiciones de\u00a0alta humedad y precipitaciones<\/u>especialmente si hay una pel\u00edcula de agua libre en las hojas. El principal medio de propagaci\u00f3n es a trav\u00e9s de la lluvia o la salpicadura de esporas, pero m\u00e1s adelante en el desarrollo de la enfermedad las esporas tambi\u00e9n se descargan forzosamente en las corrientes de aire. La infecci\u00f3n se produce en las hojas m\u00e1s j\u00f3venes de la planta durante e inmediatamente despu\u00e9s del despliegue, pero las hojas m\u00e1s viejas son m\u00e1s propicias para el desarrollo de la enfermedad. Los s\u00edntomas visuales evidentes aparecen unos 15-20 d\u00edas despu\u00e9s de la infecci\u00f3n inicial.<\/p>

S\u00edntomas<\/strong><\/h3>

Los primeros s\u00edntomas aparentes de infecci\u00f3n de las hojas son l\u00edneas cortas de color marr\u00f3n rojizo de unos 2 mm de longitud. Las l\u00edneas se convierten en rayas marrones de 20-30 mm de longitud que se ensanchan en manchas el\u00edpticas, marrones en el env\u00e9s de la hoja, negras en el haz. Las manchas est\u00e1n ligeramente hundidas y rodeadas de un halo amarillento. A continuaci\u00f3n, el centro de la mancha grande se vuelve gris, bordeado por una l\u00ednea negra y un halo amarillo. Por \u00faltimo, las manchas se fusionan, matando a la hoja.<\/p>

Epidemiolog\u00eda<\/strong><\/h3>

Tanto los conidios como las ascosporas desempe\u00f1an un papel en la propagaci\u00f3n de la enfermedad. Los conidios se forman en condiciones\u00a0de alta humedad<\/u>especialmente si hay una pel\u00edcula de agua libre en las hojas. Se forman durante el desarrollo de las primeras fases de la enfermedad (especialmente durante la fase 2, la fase 3 y la fase 4). Los principales medios de dispersi\u00f3n son el agua de lluvia y las salpicaduras; las conidias no se desprenden con el viento. Los conidios se asocian principalmente con la propagaci\u00f3n local de la enfermedad y son importantes durante los periodos de alta humedad, fuertes lluvias frecuentes y chubascos intermitentes.<\/p>

Porque\u00a0M. fijiensis<\/em>\u00a0produce relativamente pocas conidias, se considera que las ascosporas son m\u00e1s importantes en la propagaci\u00f3n de la Sigatoka negra (4,20). Sin embargo, Jacome et al. (10) afirmaron que los conidios son capaces de causar cantidades significativas de enfermedad, y los s\u00edntomas de la enfermedad son id\u00e9nticos a los causados por la infecci\u00f3n de ascosporas. Indic\u00f3 que los conidios adquieren mayor importancia durante los per\u00edodos secos, cuando el desarrollo de la enfermedad se retrasa debido a la presencia de condiciones clim\u00e1ticas menos propicias (10). Las ascosporas son el principal medio de\u00a0dispersi\u00f3n a mayores distancias<\/u>\u00a0dentro de las plantaciones y en nuevas zonas, y son el medio habitual de propagaci\u00f3n durante periodos prolongados de clima h\u00famedo (3,4,6,10, 11,15).<\/p>

Las ascosporas se producen en pseudotecios en lesiones maduras, que son comunes en las hojas m\u00e1s viejas de la planta o en hojas muertas que yacen en el suelo. Meredith y Lawrence (14) informaron de que los pseudotecios se producen en ambos lados de la superficie de la hoja, pero el n\u00famero es mayor en la superficie adaxial. Por el contrario, Gauhl et al. (6) encontraron que se produc\u00edan m\u00e1s pseudotecios y ascosporas en la superficie abaxial de la hoja. Aunque Burt et al. (2) encontraron que se liberan aproximadamente 4,5 ascosporas por pseudotecio, este n\u00famero parece muy bajo teniendo en cuenta la alta concentraci\u00f3n de in\u00f3culo que est\u00e1 presente en el aire despu\u00e9s de la lluvia (4).<\/p>

Liberaci\u00f3n de ascosporas<\/strong><\/h3>

Requiere la presencia de una pel\u00edcula de agua de lluvia o roc\u00edo<\/u>\u00a0que impregna los pseudotecios y provoca la expulsi\u00f3n forzosa de las ascosporas a trav\u00e9s de la capa l\u00edmite de la hoja, donde son diseminadas por las corrientes de aire (15,20).\u00a0La maduraci\u00f3n de los pseudotecios requiere saturaci\u00f3n<\/u>\u00a0de los tejidos de las hojas muertas durante aproximadamente 48 h (3,4,7,10,11,15). En condiciones hawaianas, las concentraciones de ascosporas aumentaron durante la noche, fueron m\u00e1ximas hacia las 0600 h y disminuyeron significativamente durante el d\u00eda. En los d\u00edas lluviosos, las concentraciones m\u00e1ximas se produjeron poco despu\u00e9s de que empezara a llover. Los aumentos estacionales de las concentraciones medias diarias de ascosporas se asocian a un aumento de las precipitaciones y de la humedad relativa (15). Gauhl (4), trabajando con bananos, report\u00f3 resultados similares bajo condiciones costarricenses. Mientras que Meredith et al. (15) no encontraron evidencia de que la producci\u00f3n o liberaci\u00f3n de ascosporas se viera afectada por las temperaturas m\u00ednimas, Gauhl (4) determin\u00f3 que existe una reducci\u00f3n en la producci\u00f3n de in\u00f3culo durante los meses m\u00e1s secos (o menos lluviosos) del a\u00f1o en la zona caribe\u00f1a de Costa Rica, que es tambi\u00e9n la estaci\u00f3n con las temperaturas m\u00e1s bajas. Las ascosporas se dispersan por el viento; sin embargo, la dispersi\u00f3n a larga distancia se limita a unos cientos de kil\u00f3metros debido a su susceptibilidad a la radiaci\u00f3n ultravioleta (17). No se ha demostrado una relaci\u00f3n consistente entre la descarga de ascosporas y el desarrollo de la enfermedad, lo que limita la utilidad de la captura de esporas para el pron\u00f3stico de la enfermedad (5,11). Las ascosporas se depositan principalmente en la superficie inferior de la hoja durante el despliegue de una hoja nueva, produciendo un patr\u00f3n de banda de infecciones en el lado que se expone primero, lo cual es un reflejo de la mayor deposici\u00f3n de esporas en la hoja cil\u00edndrica de candela durante su despliegue en comparaci\u00f3n con toda la l\u00e1mina abierta de la hoja. En consecuencia, la mayor\u00eda de las infecciones se producen en la superficie abaxial de las hojas (3,7).<\/p>

Infecci\u00f3n<\/strong><\/h3>

Los tubos germinativos tardan aproximadamente de 48 a 72 h en penetrar en los estomas (1,20), aunque el hongo puede crecer epif\u00edticamente en la superficie de la hoja hasta 6 d\u00edas antes de penetrar realmente en las hojas (1).\u00a0Infecci\u00f3n exitosa<\/u>\u00a0se fomenta mediante la ampliaci\u00f3n\u00a0periodos de alta humedad y presencia de agua libre en las hojas<\/u>\u00a0(3,7,13). La germinaci\u00f3n m\u00e1xima se produce cuando hay agua libre presente. Los conidios germinan en un rango m\u00e1s amplio de humedad relativa (92 a 100%) que las ascosporas (98 a 100%). El efecto de\u00a0temperatura<\/u>\u00a0sobre la germinaci\u00f3n puede caracterizarse por una funci\u00f3n de respuesta cuadr\u00e1tica, con un \u00f3ptimo estimado de 26,5\u00b0C (10). Stover (21) observ\u00f3 un crecimiento m\u00e1ximo de los tubos germinativos de ascosporas a\u00a026 a 28\u00b0C<\/u>\u00a0despu\u00e9s de 24 h de incubaci\u00f3n. Jacome y Schuh (8,9) informaron de que las hojas m\u00e1s viejas eran m\u00e1s susceptibles; sin embargo, E. Bureau (comunicaci\u00f3n personal) y Romero (18) observaron que las hojas m\u00e1s j\u00f3venes son m\u00e1s susceptibles (de la primera a la tercera) que las m\u00e1s viejas.<\/p>

Periodo de incubaci\u00f3n<\/strong><\/h3>

El tiempo entre la infecci\u00f3n y la aparici\u00f3n de los s\u00edntomas var\u00eda seg\u00fan las condiciones clim\u00e1ticas y la susceptibilidad de la planta (68). En banano, se estima que el momento de la infecci\u00f3n foliar coincide con la emergencia de una nueva hoja desde el \u00e1pice del pseudotallo (20). Bajo condiciones muy favorables en Costa Rica, y con un hospedero susceptible, el\u00a0periodo de incubaci\u00f3n<\/u>\u00a0puede ser tan corto como de 13 a 14 d\u00edas, mientras que durante los per\u00edodos de clima desfavorable, la duraci\u00f3n del per\u00edodo de incubaci\u00f3n puede extenderse hasta 35 d\u00edas. Existen informes similares de Nigeria sobre pl\u00e1tanos (16). Durante la estaci\u00f3n lluviosa, el per\u00edodo de incubaci\u00f3n fue de 14 d\u00edas, pero en la estaci\u00f3n seca fue de 24 d\u00edas. La duraci\u00f3n del periodo de incubaci\u00f3n tambi\u00e9n var\u00eda con la susceptibilidad del cultivar a M. fijiensis. El per\u00edodo de incubaci\u00f3n fue de 26,2 y 25,1 d\u00edas, respectivamente, en los cultivares FHIA 1 y FHIA 2, dos h\u00edbridos sint\u00e9ticos tetraploides desarrollados por la FHIA, en comparaci\u00f3n con los 22,4 d\u00edas del cultivar susceptible Grande Naine (19).<\/p>

Tras penetrar en la hoja, las hifas de <M. fijiensis<\/em>\u00a0Colonizan las c\u00e9lulas adyacentes durante aproximadamente 7 d\u00edas sin ninguna evidencia de alteraci\u00f3n de las c\u00e9lulas. Las hifas vegetativas pueden emerger de los estomas y crecer en la superficie de la hoja y penetrar en los estomas adyacentes o producir conidi\u00f3foros y conidias. Este crecimiento epif\u00edtico permite al hongo colonizar el tejido foliar adyacente, lo que da lugar a un r\u00e1pido desarrollo de los s\u00edntomas (4,20).\u00a0M. fijiensis<\/em>\u00a0tiene mayor capacidad para penetrar en varios estomas que el\u00a0M. musicola<\/em>lo que da lugar a un mayor manchado que con el pat\u00f3geno anterior (20).<\/p>

Periodo latente<\/strong><\/h3>

Aunque pueden producirse conidios en lesiones que presenten s\u00edntomas tempranos de\u00a0M. fijiensis<\/em>\u00a0y contribuyen a la epidemia, el periodo de latencia se define por el momento en que el hongo empieza a producir lesiones con pseudotecios y ascosporas maduros, que son la principal fuente de in\u00f3culo. Al igual que el periodo de incubaci\u00f3n, el periodo de latencia tambi\u00e9n var\u00eda en funci\u00f3n de las condiciones meteorol\u00f3gicas, la susceptibilidad del hospedador y la intensidad de las infecciones. En Gu\u00e1piles (Costa Rica), el periodo de latencia oscila entre 25 d\u00edas durante la estaci\u00f3n lluviosa (de junio a diciembre) y 70 d\u00edas durante la estaci\u00f3n seca. Cuando el clima es muy propicio para la descarga de ascosporas y la infecci\u00f3n, se producen muchas infecciones en las hojas. Cuando las infecciones son densas, se unen r\u00e1pidamente en una etapa muy temprana de desarrollo, acelerando la aparici\u00f3n de manchas maduras que se caracterizan por la presencia de pseudotecios y ascosporas (22). En estas condiciones, las hojas resultan r\u00e1pida y gravemente da\u00f1adas. El periodo de latencia tambi\u00e9n var\u00eda en funci\u00f3n del nivel de resistencia. Por ejemplo, el tiempo desde la emergencia de la hoja hasta el primer s\u00edntoma de mancha madura bajo las mismas condiciones naturales para el cultivar Currar\u00e9, un pl\u00e1tano de cocina perteneciente al subgrupo pl\u00e1tano, fue de 44 d\u00edas comparado con 34 d\u00edas para el cultivar Valery, un pl\u00e1tano perteneciente al subgrupo Cavendish (4). El t\u00e9rmino \"tiempo de desarrollo de la enfermedad\" es ampliamente usado en la literatura del banano en los tr\u00f3picos para referirse al periodo latente, y se define como el tiempo entre la infecci\u00f3n y la formaci\u00f3n de manchas maduras. Otro t\u00e9rmino com\u00fanmente usado en la literatura bananera es \"tiempo de evoluci\u00f3n de los s\u00edntomas\" o \"periodo de transici\u00f3n\", que es el tiempo desde los primeros s\u00edntomas hasta la aparici\u00f3n de manchas maduras (6). El tiempo de evoluci\u00f3n de los s\u00edntomas da una buena indicaci\u00f3n de la rapidez con la que la enfermedad progresa en las hojas.<\/p>

Literatura:<\/em><\/p>